Cocos nucifera

nom scientifique : 
Cocos nucifera L.
Famille : 

Distribution géographique

Originaire des îles du Pacifique, cultivé dans toutes les régions tropicales du monde.

Description botanique

Palmier pouvant atteindre 30 m de haut. Grandes feuilles de 3 à 6 m, parfois pendantes, segments nombreux, linéaire-lancéolés de 50 à 70 cm. Fleurs avec étamines d'un blanc-crémeux, de 1 à 2 cm; fleurs femelles de 2,5 cm, peu nombreuses sur chaque inflorescence. Fruit ovoïde, légèrement tri-anguleux, de 20 à 30 cm, pulpe blanche.

Voucher(s)

Jiménez,1512,JBSD

Girón,270,CFEH

Balland,45,HVB

furoncle :

huile du fruit avec "lait" frais de la graine, application locale2

infection urinaire :

eau du fruit, naturelle, voie orale5

furoncle :

huile du fruit, cataplasme

brûlure :

huile du fruit, cataplasme2

arthrite (joint pain) :

huile du fruit, naturelle, aplication locale en massages1

asthme :

huile du fruit, voie orale2

grippe :

huile du fruit, en friction sur la poitrine4

calcul rénal :

eau du fruit, naturelle, voie orale2-3

mal aux reins :

eau du fruit, naturelle, voie orale2-3

Le fruit (graine, mésoderme) et le jus (eau) de Cocos nucifera constituent un aliment de consommation humaine relativement répandue.

Contre l’asthme :

•Travail TRAMIL31

Boire 15 ou 30 mL (1 ou 2 cuillérées) d’huile de coco 2 ou 3 fois par jour.

Emplois pour les affections des voies urinaires :

Boire 250 mL (1 tasse) d'eau de coco 4 ou 6 fois par jour31.

Pour son emploi contre l'arthrite, les furoncles, la grippe et les brûlures :

Se référer à l'usage rapporté au chapitre Emplois traditionnels significatifs TRAMIL, les informations scientifiques disponibles ne permettant pas de définir un dosage plus précis.

Toute préparation médicinale doit être conservée au froid et utilisée dans les 24 heures.

Selon l’information disponible :

L’emploi contre les affections urinaires et contre l’asthme est classé REC sur la base de l’usage significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL, les études de toxicité, la validation et l’information scientifique publiée.

L’emploi de ce remède en cas d’infection urinaire ou de calculs rénaux doit être considéré comme complémentaire du traitement médical. Si les symptômes urinaires durent plus de 3 jours, ou si l’on observe une détérioration générale de l’état du patient, consulter un médecin.

L’emploi de ce remède contre l’asthme doit être considéré comme complémentaire du traitement médical. Si les symptômes durent 2 jours ou si l’on observe une détérioration de l’état du patient, consulter un médecin.

L’emploi externe contre l'arthrite, la grippe, les brûlures et les furoncles est classé REC sur la base de l’expérience traditionnelle de l’emploi (OMS/WHO)6 documenté par son emploi significatif dans les enquêtes TRAMIL.

Limiter son emploi traditionnel à des brûlures superficielles (affection épidermique), peu étendues (moins de 10% de la surface corporelle) et localisées en dehors des zones à haut risque comme le visage, les mains, les pieds et les organes génitaux.

Toute application locale doit se conformer à de strictes mesures d’hygiène pour empêcher la contamination ou une infection supplémentaire.

Si l’on observe une détérioration générale de l’état du patient, ou si la fièvre dure plus de 2 jours, consulter un médecin.

Ne pas employer avec des enfants de moins de 5 ans, ni avec des femmes enceintes ou allaitantes.

•Travail TRAMIL34

L'extrait aqueux (décoction)lyophilisédel'huile du fruit, a été administré par voie orale(0,2 mL/jour/souris), quotidiennement pendant 7 jours consécutifs à 10 souris Swiss(5 mâlesde 26,28 ±0,62 get 5 femelles de 22,76 ±0,50g). Le groupe témoin de mêmes caractéristiques a reçu de l'eau distillée (0,2 mL/20 g de poids corporel). La consommation d'aliment ni le poids n'ont subi de modification statistiquement significative. Aucun signe de toxicité ni mortalité n'ont été observés durant l'essai ni les 7 jours qui ont suivi. L'autopsie n'a montré aucune altération macroscopique.

•Travail TRAMIL35

L'extrait aqueux (décoction)lyophilisédefruit frais, a été administré par voie orale(5000 mg/kg), quotidiennement pendant 5 jours consécutifs à 10 souris Swiss(5 mâlesde 18,58 ±0,84 get 5 femelles de 17,92 ±0,59 g).Le groupe témoin de mêmes caractéristiques a reçu de l'eau distillée (0,3 mL/20 g de poids corporel). Aucun signe de toxicité ni mortalité n'ont été observés durant l'essai ni les 7 jours qui ont suivi, cependant une perte de poids statistiquement significative a été observée chez les femelles traitées ainsi qu'une augmentation de poids inférieure au groupe témoin chez les mâles, dès la première semaine et jusqu'à la fin de l'essai.L'autopsie n'a montré aucune altération macroscopique.

•Travail TRAMIL36

L'extrait aqueux (décoction 7,24%)lyophilisédel'huile du fruit frais a été administré pur (10000 mg/kg/jour) par voie orale à 20 souris Hsd:ICR de 21,07 ± 1,77g (10 mâleset 10 femelles) pendant 65 jours suivis de 14 jours d'observation, selon le protocole EPA.OPPTS.870.3100. Le groupe témoin de mêmes caractéristiques a reçu de l'eau distillée (0,3 mL/20 g de poids corporel). Aucun signe de toxicité ni mortalité n'ont été observés durant l'essai ni les 7 jours qui ont suivi (Test Polydimensionnel de Irwing), à l'exception d'une légère piloérection sur la majorité des mâles durant les semaines 3 à 11. La consommation d'aliment ni le poids n'ont subi de modification statistiquement significative. L'autopsie n'a montré aucune altération macroscopique.

•Travail TRAMIL37

L'huile du fruit pure, appliqué topiquement (0,5 mL) 4 heures par jour durant 5 jours consécutifs sur 5 cm2 de peau lésionée du dos de 3 lapins New Zealand, avec contrôle contra latéral, selon le protocole EPA870.2500, n'a pas provoqué d'œdème ni d'érythème durant l'essais ni les 11 jours d'observation suivants.

L’huile de graine (300 µg/mL) a montré une activité cytotoxique en culture cellulaire de carcinome de côlon CA-COLON-HT2927.

L’huile de coco figée incorporée à la diète de la souris (4-8%) pendant

52 semaines, a inhibé l’ornithine-décarboxylase, a augmenté la perméabilité capillaire et a induit le développement de tumeurs expérimentales provoquées par du diméthylbenzil-anthracène et stimulées avec du péroxyde de benzol28-29.

Une solution effectuée avecle fruit séché, administré par infusion intraveineuse au chien (3 mL/minute), a montré une action arrythmogène; l’infusion à raison de 5 mL/minute a entraîné de la tachycardie, de l’hémotoxicité, de la néphrotoxicité et une stimulation respiratoire, et, à raison de 10 mL/minute, de l’hypotension24.

L’huile de graine par voie orale administrée à l'être humain et au chien a montré des propriétés hypercholestérolémiques30.

On ne dispose pas d’information garantissant l’innocuité de son emploi médicinal sur des enfants, ni sur des femmes enceintes ou allaitantes.

Le jus (eau) de coco contient du sucre : sorbitol; des acides organiques : acide malique; des amino-acides et une aminopurine. Le coprah (graine séchée artificiellement) contient 20% de carbohydrates, 8% de protéines et 65% de lipides : glycérides des acides laurique, myristique, caprilique et caprique7-8.

L’endosperme contient du sorbitol9; des protéines : alanine, arginine, acide aspartique, acide glutamique, glycine, iso-leucine, lysine, méthionine, sérine, valine, hydroxy-proline10 et linamarase11; des alcanes : 2,3-butano-diol; de la lactone : δ-décalactone, δ-dodécalactone, δ-octalactone; des lipides : acides décanoïque, laurique, octanoïque; des alcaloïdes : 2,3,5-triméthyl amino-pyrazine; de l’alcanone C4 : acétoïne, 2-3-butano-dione8 et des carbohydrates : galactitol9.

 

Dans l’huile de la graine se trouvent, entre autres, les substances suivantes : des triterpènes : α-amyrine, ß-amyrine, squalène, cyclo-arthénol, 24-méthylène cyclo-arthénol; des stéroïdes : campestérol, ß-sitostérol, stigmastérol; des alcanes : n-docosane, n-dotriacontane, n-eicosane, n-hénéicosane, n-hentriacontane, n-heptacosane, n-heptadécane, n-nonacosane, n-nonadécane, n-octacosane, n-octadécane, n-pentacosane, n-triacontane, n-tricosane7; des lipides : acide caproïque12; de la vitamine E13.

 

Analyse proximale pour 100 g du fruit non arrivé à maturité14 : calories : 77; eau : 84%; protéines : 1,4%; lipides : 3,6%; glucides : 10,3%; fibres : 0,4%; cendres : 0,7%; calcium : 42 mg; phosphore : 56 mg; fer : 1 mg; sodium : 51 mg; potassium : 257 mg; carotène: 0 µg; thiamine : 0,04 mg; riboflavine : 0,03 mg; niacine : 0,80 mg; acide ascorbique : 6 mg.

•Travail TRAMIL15

L’huile de coco par voie orale (0,1, 0,2, 0,4 et 0,8 mL/kg poids) administrée au lapin anesthésié a diminué la résistance pulmonaire, de manière statistiquement significative pour des doses de 0,4 et 0,8 mL/kg.

•Travail TRAMIL16

L’huile de coco par voie orale (0,5, 1 et 2 mL/kg) a réduit significativement le nombre d’ulcères gastriques produits par ligature du pylore chez le rat Wistar. Le volume gastrique a diminué et l’acide chlorhydrique a légèrement augmenté.

•Travail TRAMIL32

L'extrait aqueux (décoction) de jeune fruit, ni l'huile de fruit mûr n'ont pas démontré d'activité antimicrobienne in vitro à concentration de 1000 µg/mL contreStaphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa, Salmonella gallinarum, Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Candida albicans niMycobacterium smegmatis.

•Travail TRAMIL33

L'extrait aqueux (décoction) lyophilisé de fruit frais, a été administré par voie orale en dose unique (1 g/kg), à 10 souris Swiss, (5 mâles et 5 femelles), à jeun depuis 6 heures. Le groupe témoin de mêmes caractéristiques a reçu de l'eau distillée (0,3 mL/20 g de poids corporel). Le charbon actif a servi de marqueur de la vitesse du transit intestinal, mesuré une heure après l'administration de l'extrait, sans qu'il soit observé de modification statistiquement significative.

Trabajo TRAMIL38 (sera traduit dans la 3è édition)

El aceite del fruto (obtenido por licuado de 2.6 kg de masa con 1.09 L de agua de coco fresco y 410 mL de agua destilada, colado y hervido a 96 ºC hasta obtener el aceite por decantación y centrifugación, rendimiento 7.24% p/p), administrado, por vía tópica, en ambas caras de la oreja derecha 4 mg/oreja, en un volumen de 10 µL de solución de aceite en acetona (200 mg/mL), modelo de inflamación inducida por 10 µL solución en acetona de acetato de tetradecanoiforbol (TPA 0.125 mg/mL) durante 4 horas, en ratón Hsd:ICR (CD-1), grupos de 6 machos y 6 hembras, el control negativo recibió acetona (10 µL/oreja) y el grupo control positivo fue tratado con solución de indometacina (25 mg/mL) 10 µL/oreja, se observó una inhibición significativa de la inflamación en los grupos tratados con el extracto.

La teinture du fruit séché (10 g de matière végétale dans 100 mL d’éthanol) n’a pas montré d’activité antimicrobienne in vitro sur plaque d’agar-agar (30 µL/disque) contre Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus, Candida albicans et a eu une faible activité contre Escherichia coli17.

L’extrait éthanolique (95%) d’écorce séchée (100 µg/mL) a mis en évidence une activité antifongique in vitro contreMicrosporum audouini, M.canis, M. gypseum, Trichophytum menthagrophytes, T.rubrum, T.tonsurans etT.violaceum, et à raison de 200 µg/mL pour Epidermophyton floccosum18.

L’huile de graine (0,05 mL) a montré un effet antifongique in vitro contre Absidia corymbifera, Aspergillus flavus, A. niger, Penicillium nigricans etCandida albicans19.

La teinture de la racine n’a pas inhibé la croissance in vitro de Neisseria gonorrheae20-21.

La décoction du fruit séché par voie orale (1 g/kg) administrée au rat a montré un effet diurétique22.

On a administré de l’eau du robinet, une solution de glucose à 4%, une solution de glucose à 4% avec 61 millimoles/L de KCl, ou de l’eau de coco à 40 rats Wistar (de 200-250 g de poids de corps) par voie orale (50 mL/kg). La mesure du volume urinaire à intervalles de 30 minutes a montré que l’eau de coco a produit un effet diurétique significativement plus important que celui de l’eau du robinet. L’effet du glucose à 4% a été moindre que celui produit par l’eau de coco, et similaire à celui du glucose avec KCl. Le pH et le contenu en sodium, chlore et potassium de l’urine des rats n’ont pas été différents de ceux que l’on a constatés après administration d’eau de coco et de glucose avec KCl23.

Une solution effectuée avecdu fruit séché administré par infusion intraveineuse au chien (3 mL/minute) a montré une faible activité diurétique24.

Une solution effectuée avecdu fruit vert, employé en réhydratation orale au Brésil, s’est révélée totalement stérile lors de l’analyse bactériologique25.

L’huile de graine par voie orale (10% de la diète) administrée à la souris femelle a eu un effet oestrogénique26.

On attribue au sorbitol un effet laxatif (5-15 g/jour), purgatif (30-50 g/jour), et édulcorant (0,6 fois le pouvoir de la saccharose)9.

Références :  

1 BALLAND V, GLASGOW A, SPRINGER F, GAYMES G, 2004 TRAMIL survey. enda-caribbean, IICA, UAG & U.PARIS XI, Saint Vincent.

2 GERMOSEN-ROBINEAU L, GERONIMO M, AMPARO C, 1984 Encuesta TRAMIL. enda-caribe, Santo Domingo, Rep. Dominicana.

3 LAGOS-WITTE S, 1988-89, 1996 Encuesta TRAMIL. Laboratorio de Histología Vegetal y Etnobotánica, Departamento de Biología, Universidad Nacional Autónoma de Honduras UNAH, Tegucigalpa, Honduras.

4 CHARLES C, 1988 TRAMIL survey. Movement for Cultural Awareness MCA, Roseau, Dominica.

5 GIRON L, 1988 Encuesta TRAMIL (Costa atlántica). Centro Mesoamericano de Tecnología CEMAT, Guatemala, Guatemala.

6 WHO, 1991 Pautas para la evaluación de medicamentos herbarios WHO/TRM/91.4 (original inglés). Programa de Medicina Tradicional, OMS, Ginebra, Suiza.

7 MOURAFE J, BROWN WH, WHITING FM, STULL JW, 1975 Unsaponifiable matter of crude and processed coconut oil. J Sci Food Agr26:523.

8 PARIS R, MOYSE H, 1981 Précis de matière médicale.Paris, France: Ed. Maloine.

9 SAITTAGAROON S, KAWAKISHI S, NAMIKI M, 1985 Generation of mannitol from copra meal. J Food Sci50(3):757-760.

10 ATAKEUCHI K, 1961 Amino acids in the endosperm of some Amazonian Palmae. Chiba Daigaku Buurii Gakuba Kiyo Shizen Kagaku 3:321-325.

11 JANSZ ER, JEYA RAJ EE, PIERIS N, ABEYRATNE DJ, 1974 Cyanide liberation from linamarin. J Natl Sci Counc Sri Lanka 2:57-65.

12 KINDERLERER JL, KELLARD B, 1987 Alkylpyrazines produced by bacterial spoilage of heat-treated and gamma-irradiated coconut. Chem Ind (London) 16:567-568.

13 MANNAN A, AHMAD K, 1966 Studies on vitamin E in foods of East Pakistan. Pak J Biol Agr Sci9:13.

14 DUKE JA, ATCHLEY AA, 1986 Handbook of proximate analysis tables of higher plants.Boca Raton, USA: CRC Press. p47.

15 CAMBAR P, ALGER J, 1989 Efectos broncopulmonares del aceite de coco en conejos. Informe TRAMIL. Unidad de Farmacología, Facultad de Ciencias Medicas, Universidad Nacional Autónoma de Honduras UNAH, Tegucigalpa, Honduras.

16 CAMBAR P, 1987 Prevención de la producción de úlceras gástricas experimentales por algunos extractos de plantas.Informe TRAMIL. Unidad de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas, Universidad Nacional Autónoma de Honduras UNAH, Tegucigalpa, Honduras.

17 CACERES A, GIRON LM, ALVARADO SR, TORRES MF, 1987 Screening of antimicrobial activity of plants popularly used in Guatemala for the treatment of dermatomucosal diseases. J Ethnopharmacol 20(3):223-237.

18 VENKATARAMAN S, RAMANUJAN T, VENKATASUBBU V, 1980 Antifungal activity of the alcoholic extract of coconut shellCocos nucifera L. J Ethnopharmacol2(3):291-293.

19 JAIN SK, AGRAWAL SC, 1992 Sporostatic effect of some oils against fungi causing otomycosis. Indian J Med Sci 46(1):1-6.

20 CACERES A, MENENDEZ H, MENDEZ E, COHOBON E, SAMAYAO BE, JAUREGUI E, PERALTA E, CARRILLO G, 1992 Antigonorrhoeal activity of plants used in Guatemala for the treatment of sexually transmitted diseases. Facultad de Ciencias Químicas y Farmacia, Universidad de San Carlos, Guatemala, Guatemala. TRAMIL VI, Basse Terre, Guadeloupe, UAG/enda-caribe.

21 CACERES A, MENENDEZ H, MENDEZ E, COHOBON E, SAMAYAO BE, JAUREGUI E, PERALTA E, CARRILLO G, 1995 Antigonorrhoeal activity of plants used in Guatemala for the treatment of sexually transmitted diseases. J Ethnopharmacol48(2):85-88.

22 CACERES A, GIRON LM, MARTINEZ AM, 1987 Diuretic activity of plants used for the treatments of urinary ailments in Guatemala. J Ethnopharmacol19(3):233-245.

23 RODRÍGUEZ M, SÁNCHEZ C, 1982 Diuresis del agua de pipa (Cocos nucifera) en ratas. Rev Méd Panamá 7(3):186-19l.

24 KETUSINH O, 1954 Risks associate with intravenous infusion of coconut juice. J Med Ass Thailand 37(5):249-271.

25 MORTON J, 1981 Atlas of medicinal plants of Middle America.Springfield, USA: III: Charles C. Thomas Publisher.

26 BOOTH AN, BICKOFF EM, KOHLER GO, 1960 Estrogen-like activity in vegetable oils and mill by-products. Science 131:1807.

27 SALERNO JW, SMITH DE, 1991 The use of sesame oil and other vegetable oils in the inhibiting of human colon cancer growth in vitro. Anticancer Res 11(1):209-215.

28 LOCNISKAR M, BELURY MA, CUMBERLAND AG, PATRICK KE, FISCHER SM, 1991 The effect of dietary lipid on skin tumor promotion by benzoyl peroxide, comparison of fish, coconut and corn oil. Carcinogenesis 12(6):1023-1028.

29 BERTON TR, FISCHER SM, CONTI CJ, LOCNISKAR MF, 1996 Comparison of ultraviolet light-induced skin carcinogenesis and ornithine decarboxylase activity in sencar and hairless SKH-1 mice fed a constant level of dietary lipid varying in corn and coconut oil. Nutr Cancer 26(3):353-363.

30 CHINDAVANIG A, 1971 Effect of vegetable oils in plasma cholesterol in man and dog. Master Thesis, Dept. Biochemistry, Mahidol University, Bangkok, Thailand.

31 CARBALLO A, 1995 Cálculo de concentración y dosis de las drogas vegetales TRAMIL: Mensuraciones farmacognósticas y aproximaciones técnico-clínicas. Laboratorio Provincial de Producción de Medicamentos, Sancti Spiritus, Cuba.

32 Olmedo D, RODRIGUEZ N, ESPINOSA A, VASQUEZ Y, Gupta MP, 2005 Ensayo antimicrobiano de algunas especies con usos significativos TRAMIL-Centroamérica. Informe TRAMIL. Centro de Investigaciones Farmacognósticas de la Flora Panameña CIFLORPAN, Facultad de Farmacia, Universidad de Panamá, Panamá, Panamá.

33 GarcIa-GONZÁLEZ M, BARBOZA CJ, 2005 Velocidad del tránsito intestinal en ratones, del extracto acuoso del fruto fresco de Cocos nucifera. Informe TRAMIL. PRONAPLAMED. Depto de Fisiología, Escuela de Medicina, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

34 GarcIa-GONZÁLEZ M, BARBOZA CJ, 2005 Toxicidad aguda dosis repetida, en ratones, del extracto acuoso del aceite del fruto de Cocos nucifera. Informe TRAMIL.PRONAPLAMED. Depto de Fisiología, Escuela de Medicina, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

35 GarcIa-GONZÁLEZ M, BARBOZA CJ, 2005 Toxicidad aguda (5000 mg/kg) dosis repetida, en ratones, del extracto acuoso (decocción) del fruto fresco de Cocos nucifera. Informe TRAMIL.PRONAPLAMED. Depto de Fisiología, Escuela de Medicina, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

36 PAZOS L, COTO T, GONZALEZ S, 2006 Toxicidad oral subcrónica, dosis repetida, en ratón, de aceite del fruto fresco de Cocus nucifera. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos, LEBi, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

37 PAZOS L, COTO T, GONZALEZ S, 2006 Irritabilidad dérmica, piel lesionada en conejos, del aceite del fruto puro de Cocus nucifera. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos, LEBi, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

38 PAZOS L, COTO T, REYES L, 2007 Antiinflamatorio tópico, en ratones, del aceite del fruto de Cocus nucifera. Informe TRAMIL, Laboratorio de Ensayos Biológicos, LEBi, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

 

Décharge

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