Cinnamomum verum

nombre científico: 
Cinnamomum verum J. Presl
sinónimo: 
Cinnamomum zeylanicum Blume
Familia botánica: 

Descripción botánica

Arbol de 8-15 m, la corteza muy aromática. Hojas opuestas y sub-opuestas, de hasta 15 cm, marcadamente trinervadas desde la base hasta cerca del ápice, brillosas en el haz, glabras, aovadas a elíptico-lanceoladas, redondeadas en la base. Flores blanco-amarillentas en panículas laxas. Frutos de 1.7 cm con punta.

Voucher(s)

Slane,528,SLNH

Jiménez,1509,JBSD

diarrea:

corteza (astillas), decocción, vía oral1

vómito:

corteza (astillas), decocción, vía oral2-3

La corteza (astillas) de Cinnamomum verum constituye un condimento de consumo humano relativamente extendido.

Para diarrea y vómito:

Preparar una decocción con 3 gramos de astilla en 1/2 litro (2 tazas) de agua, hervir por un mínimo de 10 minutos en recipiente tapado. Enfriar y beber 1 taza 2 veces al día.

La dosis diaria promedio de la corteza para adultos es de 2 a 4 gramos28.

De acuerdo con la información disponible:

El uso para diarrea y vómitos se clasifica como REC con base en el empleo significativo tradicional documentado en las encuestas TRAMIL y la información científica publicada.

En caso de que se observe un deterioro del paciente o que la diarrea persista por más de 3 días en el adulto o 2 días en niños mayores de 3 años o que el vómito persista por más de 2 días debe buscar atención médica.Se considera este recurso como complementario de la terapia de rehidratación oral.

Evitar su ingesta en caso de úlcera gastroduodenal o gastritis, o con antecedentes de alergia a la planta.

En caso de envenenamiento accidental por ingestión de aceite esencial o preparados que lo contiene, se requiere atención médica.

No usar durante el embarazo, la lactancia ni en niños menores de 3 años.

No utilizar por más de 3 días consecutivos.

Trabajo TRAMIL29

El extracto acuoso (decocción) liofilizado, de astillas, por vía oral, a 10 ratones machos Swiss (2 g/kg/día) 5 días por semana (20 administraciones) y observados 7 días después de finalizado el tratamiento, provocó la muerte de un animal 8 días después de la primera administración y presentó síntomas de deshidratación 3 días antes de su deceso. Durante los primeros 11 días del tratamiento se observó en el 90% de los animales, efectos depresores, (disminución de la actividad motora y de la reacción de alarma, piloerección y pérdida de peso corporal). A partir del día 12 los animales se recuperaron y permanecieron sin manifestaciones tóxicas hasta el final del ensayo. A partir del día 8 se estableció una diferencia estadísticamente significativa (p < 0.05) de peso corporal y se mantuvo hasta el final del ensayo (grupo tratado 27.25 ± 0.74 g y el grupo control 31.08 ± 0.44 g). La autopsia macroscópica no evidenció alteraciones internas.

El extracto acuoso de corteza (1%) mostró actividad mutagénica en el modelo Salmonella typhimurium (5-10 picolitros/disco)21.

Los extractos acuosos de corteza obtenidos con agua caliente o por maceración acuosa (50 mg de sólido/disco) fueron negativos en el modelo de mutagenicidad in vitro con Bacillus subtilis H17 (rec +) y M45 (rec -). La corteza cruda y los residuos sólidos de ambas extracciones acuosas fueron mutagénicos22.

Los extractos de corteza con etanol, cloroformo y éter de petróleo mostraron efecto mutagénico en una prueba preliminar; los extractos con cloroformo y éter de petróleo resultaron negativos al añadirle la fracción S-9 de enzimas hepáticas23.

Los extractos acuoso y alcohólico de la corteza (50 µg/mL) indujeron actividad mitogénica in vitro, en cultivo de linfocitos11.

El extracto etanólico de corteza por vía oral a ratón (0.5, 1 y 3 g/kg) no provocó signos evidentes de toxicidad ni muerte. El mismo extracto administrado diariamente durante 90 días (100 mg/kg) indujo disminución del peso del hígado y de los niveles de hemoglobina, aumento del peso de los órganos reproductores y del número y movilidad de los espermatozoides24.

El extracto acuoso de corteza (1%) por intubación gástrica a perro, provocó irritación de la mucosa gástrica, el extracto salino al 0.66% no indujo esta reacción25.

El contacto reiterado con la corteza puede inducir reacciones alérgicas (dermatitis de contacto)26-27.

No se dispone de información que documente la seguridad de su uso medicinal en niños, durante el embarazo o la lactancia.

La corteza ha sido ampliamente estudiada y contiene, entre otros componentesaceite esencial (1-4%): cinamaldehído (65-90%), eugenol (4-10%), cariofileno, l-linalol, l-felandreno, p-cimeno, furfural, acetato de eugenol, alcohol cinámico y cinamílico, metil-eugenol, benzaldehído, cinamaldehído, cinamil-acetato; taninos, azúcares, cumarinas, goma, resinas, diterpenos: cinnzeilanina y cinnzeilanol4-5.

Análisis proximal de 100 g de corteza6: calorías: 305; agua: 11.8%; proteínas: 3.1%; grasas: 1.2%; carbohidratos: 80.6%; cenizas: 3.3%; calcio: 470 mg; tiamina: 0.02 mg; riboflavina: 0.07 mg; niacina: 0.7 mg.

El extracto alcohólico de corteza mostró actividad antihelmíntica in vitro contra Ascaris lumbricoides7.

El extracto alcohólico de corteza indujo efecto antinociceptivo en ratón, en los modelos de contorsiones inducidas por ácido acético intraperitoneal y de plato caliente. En el modelo de edema de la oreja en ratón inducido por xileno y en el modelo de granuloma por algodón en rata, no provocó acción antiinflamatoria8.

A la corteza se le atribuye actividad antifúngica, antibacteriana9-10, nematicida11-12 y anticonvulsiva13-14.

El aceite esencial, en el modelo experimental de músculo liso de tráquea (DE50= 41 mg/L) y de íleon aislado de cobayo (DE50= 12 mg/L), provocó actividad miorrelajante5. Al aceite esencial se le atribuye efecto antiviral, lipolítico, carminativo, astringente, antiséptico4, antibacteriano, antifúngico15, anestésico local, citotóxico in vitro en el modelo de leucemia L1210, estrogénico, relajante de la musculatura lisa16-18, inhibidor de la síntesis de prostaglandinas19 y repelente (dilución al 0.0125%)20.

Referencias:  

1 CHARLES C, 1988 TRAMIL survey. Movement for Cultural Awareness MCA, Roseau, Dominica.

2 WENIGER B, ROUZIER M, 1986 Enquête TRAMIL. Service Oecuménique d'Entraide SOE, Port au Prince, Haïti.

3 GERMOSEN-ROBINEAU L, GERONIMO M, AMPARO C, 1984 Encuesta TRAMIL. enda-caribe, Santo Domingo, Rep. Dominicana.

4 LEUNG A, 1980 Encyclopedia of common natural ingredients used in food, drugs and cosmetics. Hoboken, USA: Wiley Interscience Publication.

5 NAMBA T, KIKUCHI T, MIKAGE M, KADOTA S, KOMATZU K, SHMIZU M, TOMIMORI T, 1987 Studies on the natural medicinal resources from Sri Lanka (1). On anatomical and chemical differences among each grade of Cinnamomi veri cortex. Shoyakugaku Zasshi 41(1):35-42.

6 DUKE JA, ATCHLEY AA, 1986 Handbook of proximate analysis tables of higher plants. Boca Raton, USA: CRC Press. p44.

7 RAJ RK, 1975 Screening of indigenous plants for antihelmintic action against human Ascaris lumbricoides: Part II. Indian J Physiol Pharmacol 19(1):47-49.

8 ATTA AH, ALKOFALI A, 1998 Anti-nociceptive and antiinflammatory effects of some Jordanian medicinal plant extracts. J Ethnopharmacol 60(2):117-124.

9 SHARMA A, GHANEKAR AS, PADWAL-DESAI SR, NADKARNI GB, 1984 Microbiological status and antifungal properties of irradiated spices. J Agric Food Chem 32(5):1061-1063.

10 GEORGE M, PETALAI K, 1949 Investigations on plant antibiotics. Part IV. Further search for antibiotic substances in Indian medicinal plants. Indian J Med Res 37:169-181.

11 NAMBA T, SAWA K, GEWALI MB, HATTORI M, NARUSE Y, KAGAMIMORI S, 1989 Studies on development of immunomodulating drugs (II). Effect of Ayurvedic medicines on blastogenesis of lymphocytes from mice. Shoyakugaku Zasshi 43(3):250-255.

12 KIUCHI F, NAKAMURA N, MIYASHITA N, NISHIZAWA S, TSUDA Y, KONDO K, 1989 Nematocidal activity of some anthelmintic traditional medicines and spices by a new assay method using larvae of Toxocara canis. Shoyakugaku Zasshi 43(4):279-287.

13 SUGAYA E, ISHIGE A, SEKIGUCHI K, IIZUKA S, SUGIMOTO A, YUZURIHARA M, HOSOYA E, 1988 Inhibitory effect of a mixture of herbal drugs TJ-960 (SK) on pentylenetetrazol-induced convulsions in mice. Epilepsy Res 2(5):337-339.

14 SUGAYA E, ISHIGE A, SEKIGUCHI K, IIZUKA S, ITO K, SUGIMOTO A, ABURANDA M, HOSOYA E, 1988 Inhibitory effect of TJ-960 (SK) on pentylenetetrazol-induced EEG power spectrum changes. Epilepsy Res 2(1):27-31.

15 RAHARIVELOMANANA PJ, TERROM GP, BIANCHINI JP, COULANGES P, 1989 Study of the antimicrobial action of various essential oil extracts from Madagascar plants. II. The Lauraceae. Arch Inst Pasteur Madagascar 56(1):261-271.

16 REITER M, BRANDT W, 1985 Relaxant effects of terpenoid on tracheal and ileal smooth muscles of the guinea pig. Arzneim-Forsch 35(1):408-414.

17 SUGAYA E, TSUDA T, SUGAYA E, USAMI M, TAKAMURA K, 1979 Local anaesthetic action of the Chinese medicine Saiko-Keishi-To. Planta Med 37:274-276.

18 HARRIES N, JAMES KC, PUGH WK, 1978 Antifoaming and carminative actions of volatile oil. J Clin Pharmacol 2:171-177.

19 WAGNER H, WIERER M, BAUER R, 1986 In vitro inhibition of prostaglandin biosynthesis by essential oils and phenolic compounds. Planta Med (3):184-187.

20 GUPTA M, 1987 Essential oil: a new source of bee repellents. Chem Ind (London) 5:161-163.

21 SIVASWAMY SN, BALACHANDRAN B, BALANEHRU S, SIVARAMAKRISHNAN VM, 1991 Mutagenic activity of south Indian food items. Indian J Exp Biol 29(8):730-737.

22 UNGSURUNGSIE M, SUTHIENKUL O, PAOVALO C, 1982 Mutagenicity screening of popular Thai species. Food Chem Toxicol 20(5):527-530.

23 UNGSURUNGSIE M, PAOVALO C, NAOANI A, 1984 Mutagenicity of extracts from Ceylon cinnamom in the rec (recombination) assay. Food Chem Toxicol 22(2):109-112.

24 SHAH AH, AL-SHARCEF AH, AGEEL AM, QURESHI S, 1998 Toxicity studies on mice of common species: Cinnamomum zeylanicum bark and Piper longum fruits. Plant Foods Hum Nutr 52(3):231-239.

25 SANCHEZ-PALOMERA E, 1951 Concept of the mucous barrier and its significance. Gastroenterology 18:269-286.

26 SEETHARAM K, PASRICHA J, 1987 Condiments and contact dermatitis of the finger-tips. Indian J Dermatol Venereol Leprol 53(6):325-328.

27 STAGER J, WUTHRICH B, JOHANSSON S, 1991 Spice allergy in celery-sensitive patients. Allergy 46(6):475-478.

28 World Health Organization, 1999 Cortex Cinnamomi. WHO monographs on selected medicinal plants. Vol. I. Geneva, Switzerland: WHO. p95-104.

29 GarcIa-GONZÁLEZ M, BARBOZA CJ, 2005 Toxicidad aguda dosis repetida, en ratones, del extracto acuoso (decocción) de las astillas de Cinnamomum verum . Informe TRAMIL.PRONAPLAMED. Depto de Fisiología, Escuela de Medicina, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

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