Senna alata

nombre científico: 
Senna alata (L.) Roxb.
sinónimo: 
Cassia alata L.
Familia botánica: 

Descripción botánica

Arbusto de hasta 3 m de alto. Hojas paripinnadas de hasta 70 cm de largo; folíolos de 6 a 14 pares, oblongos a obovados de 4 a 15 cm, emarginados. Racimos terminales con numerosas flores de color amarillo dorado; sépalos ligeramente distintos entre sí; pétalos 5 casi iguales en forma de uña. Vaina plana linear con 4 alas amplias crenuladas; semillas de color café obscuro a negras.

Voucher(s)

Delens,138,VEN

Longuefosse &Nossin,36,HAVPMC

Girón,154,CFEH

Jiménez,3528,JBSD

Balland,44,HVB

Delaigue,25,NHTT

tiña:

hoja fresca, machacada con sal, aplicación local5

afecciones cutáneas:

hoja, maceración acuosa, baños1-2

granos de la piel:

hoja, maceración acuosa, baños3

hongos (micosis interdigital):

hoja, machacada, cataplasma2

lota (manchas marron sobre la piel):

hoja, infusión o decocción, aplicación local25

paño (pitiriasis versicolor):

hoja, zumo, aplicación local4

afecciones cutáneas:

hoja, zumo, aplicación local1,25

Para afecciones y granos de la piel:

Picar 50 gramos de hoja (15-20 folíolos) y agregarlos a 1 litro (4 tazas) de agua hervida. Dejar en reposo durante 12 horas. Realizar lavados de la zona afectada 2-3 veces al día3.

Para tiña y hongos (micosis interdigital):

Limpiar la lesión con agua hervida y jabón. Lavar adecuadamente la hoja y machacarla, aplicar 5 gramos (1 cucharadita) de material vegetal sobre la piel de la zona afectada. Cubrir con un apósito o paño limpio y cambiar 3-4 veces al día.

Ninguna preparación debe guardarse por más de 24 horas, ni fuera de refrigeración.

De acuerdo con la información disponible:

El uso para afecciones de la piel, paño (pitiriasis versicolor), granos de la piel, tiña y hongos (micosis interdigital) se clasifica como REC con base en el empleo significativo tradicional documentado en las encuestas TRAMIL, los estudios de toxicidad, validación y la información científica publicada.

En caso de que se observe un deterioro del paciente o que los síntomas agudos (prurito, exudado, eritema) persistan por más de 5 días, debe buscar atención médica.

El tratamiento de las lesiones por hongos en la piel debe ser durante 14 a 21 días

Toda aplicación tópica debe emplear estrictas medidas higiénicas que impidan la contaminación o infección sobreañadida.

Trabajo TRAMIL21

La decocción de hoja fresca al 30% (rendimiento del extracto 13.6 mg/mL) se administró por vía oral, en dosis única de 6154 mg de material vegetal/kg de peso corporal (volumen máximo 2 mL/100 g), a 6 ratas Sprague Dawley (3 machos y 3 hembras). El control se realizó con agua destilada en la misma cantidad de animales e iguales características. Tuvieron un período constante de observación de 24 horas, continuado por 14 días. No se presentó muerte u otros signos clínicos adversos; en los estudios histopatológicos no se evidenció daño orgánico. El extracto no presentó toxicidad en este ensayo.

Trabajo TRAMIL22

La maceración acuosa de hoja fresca al 20%, aplicada tópicamente sobre la piel (0,6 mL, equivalente a 0,12 g de material vegetal fresco, en un área de aproximadamente 6 cm2), en conejo macho Nueva Zelanda. A las 4 horas se retiró el parche y se hicieron observaciones para las lecturas de eritema y edema a las 24, 48 y 72 horas, no evidenciándose ningún signo clínico, por lo que la decocción de hoja fresca se encuentra en la categoría no irritante.

Trabajo TRAMIL27

La hoja fresca machacada, en aplicación tópica (0.6 g de material vegetal sobre piel afeitada en parche 4 x 3 cm durante 24 h), a rata Wistar (5 hembras y 5 machos), modelo de toxicidad aguda tópica, no provocó muerte, ni otros signos adversos durante los 14 días de observación. El estudio histológico de los órganos no mostró lesiones.

La tintura (maceración hidroalcohólica) (10%) de hoja fresca administrada por vía oral al ratón Swiss albino (peso 18 a 22 g)mostró una DL50 = 1459.32 mg/kg, según el método OECD-198726.

El extracto hidroalcohólico de hoja, por vía oral y subcutánea en ratón (10 g de planta seca/kg) no mostró signos evidentes de toxicidad23.

El extracto hidroalcohólico (30%) de follaje, administrado en concentraciones de 0.50 a 2.91 mg de sólidos totales/mL, en el ensayo in vitro con Aspergillus nidulans D30 (segregación mitótica) y en dosis de 0.60, 1.21, 2.43 y 1313, 2625, 5250 mg/kg en la prueba in vivo de inducción de micronúcleos no mostró actividad mutagénica24.

No se dispone de información que documente la seguridad de su uso en aplicación local en niños, durante el embarazo o la lactancia.

La hoja contiene antraquinonas : aloe-emodina, ácido crisofánico, reína6-7, dihidroximetilantraquinona; taninos8, pero no contiene saponinas9.

El fruto contiene alcaloides10; la hoja y la flor no contienen leucoantocianinas9.

La planta contiene derivados antracénicos de aloe-emodina y reína11.

Trabajo TRAMIL12

Los extractos acuoso (10%) e hidroalcohólico (95%) de hoja fresca, in vitro, fueron evaluados contra Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus yBacillus subtillis; Trichophyton rubrum, Aspergillus niger, Microsporum canis y Candida albicans. El extracto acuoso no inhibió el crecimiento de ninguna cepa. El hidroalcóholico mostró actividad contra todos los microorganismos estudiados, específicamente Trichophyton rubrum (100%),Microsporum canis (83%) y Aspergillus niger (51.6%).

El zumo de planta entera in vitro frente a Epidermophyton floccosum, Microsporum gypseum, Trichophyton rubrum, Candida albicans, Cryptococcus neoformans y Saccharomyces cerevisiae fue inactivo13.

El extracto de hoja seca in vitro, frente a Staphylococcus aureus (cepas sensibles y resistentes a penicilina) y Pseudomonas aeruginosa, aislados de secreciones y por raspado de la piel de pacientes mostró actividad antibacteriana. Otras bacterias sensibles fueron Streptomyces pyogenes, Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae ySerratia marcescens14.

La infusión de hoja seca joven in vitro (5%), inhibió totalmente el crecimiento de Trichophyton mentagrophytes, T. rubrum, Microsporum canis, M. gypseum y Epidermophyton floccosum inguinalis, pero no fue activa al 2.5%15. Dichos extractos no inhibieron (2.5 y 5%) el crecimiento de Candida tropicalis, C. albicans ni Cryptococcus neoformans16.

El extracto hidroalcohólico (35%) de hoja seca (10%), in vitro, no mostró actividad sobre Neisseria gonorrhoea17.

Las decocciónes de hoja, corteza del tallo y raíz (1 mL)in vitro, frente a Epidermophyton floccosum, Microsporum gypseum, M. canis yTrichophyton mentagrophytes fueron inactivos15.

El extracto etanólico seco de hoja aplicado en pomada (10% en base polietilenglicol) sobre la piel de conejo, demostró actividad cicatrizante18.

El extracto acuoso de hoja aplicado tópicamente (en concentración de 100, 90 y 80% según la zona corporal) en humano con pitiriasis versicolor, eliminó el hongo Malassezia furfur causante de la enfermedad19.

Al extracto hidroalcohólico (50%) de hoja seca, se le atribuyó actividad antihistamínica20.

Referencias:  

1 DELENS M, 1990-92 Encuesta TRAMIL. Centro al Servicio de la Acción Popular CESAP, Caracas, Venezuela.

2 LONGUEFOSSE JL, NOSSIN E, 1990-95 Enquête TRAMIL. Asociation pour la valorisation des plantes médicinales de la Caraïbe AVPMC, Fort de France, Martinique.

3 GIRON L, 1988 Encuesta TRAMIL (Costa atlántica). Centro Mesoamericano de Tecnología CEMAT, Guatemala, Guatemala.

4 Castillo D, Rodriguez S, de los Santos C, Belen A, 2003 Encuesta TRAMIL (región Este). Dep. de Botánica, Jardín Botánico Nacional, Santo Domingo, República Dominicana.

5 BALLAND V, GLASGOW A, SPRINGER F, GAYMES G, 2004 TRAMIL survey. enda-caribbean, IICA, UAG & U.PARIS XI, Saint Vincent.

6 HARRISON J, GARRO CV, 1977 Study on anthraquinone derivatives fromCassia alata L. (Leguminosae). Rev Peru Bioquim 1(1):31-33.

7 MULCHANDANI NB, HASSARAJANI SA, 1975 Isolation of 1,3,8-trihydroxy-2-methylanthraquinone fromCassia alata (leaves). Phytochemistry 14:2728b.

8 HAUPTMANN H, NAZARIO LL, 1950 Some constituents of the leaves of Cassia alata. J Am Chem Soc 72:1492-1495.

9 RAO CK, SUBHASHINI G, 1986 Saponins & leucoanthocyanins in Cassia L. Curr Sci 55(6):320-321.

10 SMOLENSKI SJ, SILINIS H, FARNSWORTH NR, 1975 Alkaloid screening. VI. Lloydia 38(3):225-255.

11 RAI MK, UPADHYAY S, 1988 Screening of medicinal plants of Chindwara district against Trichophyton mentagrophytes: a causal organism of Tinea pedis. Hindustan Antibiot Bull 30(1/2):33-36.

12 FIALLO M, VAZQUEZ TINEO M, 1992 Evaluación in vitro de plantas usadas en afecciones de la piel: Extractos vegetales antimicóticos y antimicrobianos. Informe TRAMIL. CIBIMA, Fac de Ciencias, Universidad Autónoma UASD, Santo Domingo, Rep. Dominicana.

13 ACHARARIT C, PANYAYONG W, RUCHATAKOMUT E, 1983 Inhibitory action of some Thai herbians (medicinal plants) to fungi. Mahidol Univ Fac Pharm Bangkok, Thailand.

14 BENJAMIN TV, LAMIKANRA A, 1981 Investigation ofCassia alata, a plant used in Nigeria in the treatment of skin diseases. Quart J Crude Drug Res 19(2/3):93-96.

15 CACERES A, LOPEZ BR, GIRON MA, LOGEMANN H, 1991 Plants used in Guatemala for the treatment of dermatophytic infections. 1. Screening for antimycotic activity of 44 plant extracts. J Ethnopharmacol 31(3):263-276.

16 FUZELLIER MC, MORTIER F, LECTARD P, 1982 Activité antifongique deCassia alata L. Ann Pharm Fr 40(4):357-363.

17 MATTA DC, 2000 Determinación de la actividad anti Neisseria gonorrhoeae de extractos vegetales por un método de dilución en agar (Tesis de química-biología). Facultad de Ciencias Químicas y Farmacia, Universidad de San Carlos USAC, Guatemala, Guatemala.

18 PALANICHAMY S, AMALA BHASKAR E, BAKTHAVATHSALAM R, NAGARAJAN S, 1991 Wound healing activity of Cassia alata. Fitoterapia 62(1):153-156.

19 DAMODARAN S, VENKATARAMAN S, 1994 A study on the therapeutic efficacy of Cassia alata, Linn. Leaf extract against pityriasis versicolor. J Ethnopharmacol 42(1):19-23.

20 MOKKHASMIT M, NGARMWATHANA W, SAWASDIMONGKOL K, PERMPHIPHAT U, 1971 Pharmacological evaluation of Thai medicinal plants (cont.). J Med Assoc Thai 54(7):490-504.

21 MARTINEZ MJ, MOREJON Z, LOPEZ M, BOUCOURT E, BARCELO H, LAYNEZ A, FUENTES V, MORON F, 2003 Clases Toxicidad Aguda (CTA) de hoja frescade Senna alata (L.) Roxb. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba.

22 LOPEZ M, MARTINEZ MJ, MOREJON Z, BOUCOURT E, FERRADA C, FUENTES V, MORON F, 2005 Irritabilidad dérmica primaria de la maceración acuosa de hoja fresca de Senna alata (L.) Roxb. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Medicina “Dr. Salvador Allende”, Cerro, C. Habana, Cuba.

23 MOKKHASMIT M, SWATDIMONGKOL K, SATRAWAHA P, 1971 Study on toxicity of Thai medicinal plants. Bull Dept Med Sci 12(2-4):36-65.

24 VIZOSO A, RAMOS A, VILLAESCUSA A, BETANCOURT J, GARCIA A, PILOTO J, DECALO M, 2002 Passiflora incarnataL. y Senna alata (L.) Roxo: Estudio toxicogenético que emplea 2 sistemas de ensayos a corto plazo. Rev Cubana Plant Med 7(1):27-31.

25 DELAIGUE J, 2005 TRAMIL survey. PRDI, Tobago House of Assembly, Scarborough, Tobago.

26 LOGARTO PARRA A, SILVA YHEBRA R, GUERRA SARDINAS I, IGLESIAS BUELA L, 2001 Comparative study of the assay of Artemia salina L. and the estimate of the medium lethal dose (LD50 value) in mice, to determine oral acute toxicity of plant extracts. Phytomedicine 8(5):395-400.

27 MARTINEZ MJ, BETANCOURT J, LOPEZ M, MOREJON Z, FUENTES V, MORON F, 2005 Clases tóxicas agudas tópica de hoja fresca machacada de Senna alata. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba.

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