Petiveria alliacea

nom scientifique : 
Petiveria alliacea L.
Famille : 

Distribution géographique

Originaire d’Amérique tropicale, cultivée et naturalisée dans les régions tropicales.

Description botanique

Plante herbacée ou suffrutescente pérenne pouvant atteindre 1 m de haut, d’odeur fétide. Feuilles alternes, oblongues à elliptiques, aiguës à acuminées à la pointe, généralement glabres. Epis pouvant atteindre 40 cm, pubérulents; fleurs parfaites, subsessiles, sans pétales. Akène d’environ 8 mm de long, cunéiforme, strié, avec 6 soies terminales courbées vers l'arrière; graine solitaire, linéaire.

Voucher(s)

Jiménez,24,JBSD

Girón,184,CFEH

Gómez,140961,HUA

FLORPAN,1936,PMA

Ochoa,269,HPMHV

flatulence :

racine, infusion, voie orale5

mal de tête :

feuille, écrasée, en inhalation2

rhumatismes :

feuille et racine, décoction avec du sel et du sucre, voie orale9-10

maux de dent :

feuille, macération, en rinçages buccaux2

sinusite :

racine et tige, pulvérisées, en inhalation1,6

rhume :

feuille et tige, décoction, voie orale8

douleur musculaire :

feuille, décoction, bain1

maladies de la peau :

feuille, décoction, lavage1

grippe :

feuille, décoction, voie orale7

grippe :

racine, décoction, voie orale4

mal de tête :

racine, broyée, en inhalation3,6

grippe :

racine, broyée, en inhalation6

Contre les troubles digestifs et le rhume :

Préparer une décoction avec 30 grammes (3 cuillérées) de feuilles hachées menu dans 1 litre d’eau (4 tasses). Faire bouillir au moins 10 minutes dans un récipient couvert. Filtrer, laisser refroidir et boire 2-3 tasses par jour37.

Contre les rhumatismes :

Préparer une décoction avec 30 grammes (3 cuillérées) de feuilles et de racine hachées menu, dans 1 litre d’eau (4 tasses). Faire bouillir pendant au moins 10 minutes dans un récipient couvert. Filtrer, laisser refroidir et boire 2-3 tasses par jour37.

Contre le rhume (sinusite) :

Préparer une poudre fine de racine et de tige à partir de la matière séchée et tamisée, inhaler par chaque narine 0,2 à 0,5 grammes, 2 fois par jour38.

Contre les maux de tête, les douleurs dentaires, les douleurs musculaires, les flatulences, la grippe et les maladies de la peau :

Se référer à l'usage rapporté au chapitre Emplois traditionnels significatifs TRAMIL, les informations scientifiques disponibles ne permettant pas de définir un dosage plus précis.

Toute préparation médicinale doit être conservée au froid et utilisée dans les 24 heures.

Selon l’information disponible :

L’emploi de la feuille contre les troubles digestifs (maux d’estomac, digestion difficile ou lente, gaz), les douleurs dentaires, les douleurs musculaires, les maladies de la peau, les rhumatismes et le rhume est classé REC sur la base de l’usage significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL et les études de toxicité.

Si l’état du patient se détériore, ou si les maux d’estomac durent plus de 3 jours, consulter un médecin.

L’emploi contre les maux de tête, les flatulences, la grippe et le rhume (sinusite) est classé REC sur la base de l’expérience traditionnelle de l’usage (OMS/WHO)11 documenté par son emploi significatif dans les enquêtes TRAMIL.

Toute application locale doit se conformer à de strictes mesures d’hygiène, pour empêcher la contamination ou une infection supplémentaire.

Compte tenu des risques que représente l’interaction documentée avec l’insuline ou des hypoglycémiants oraux, il convient d’éviter l’ingestion de décoction de feuille et de branche chez les personnes prenant ou utilisant ces médicaments afin d’éviter un renforcement potentiel de leurs effets.

La racine et la tige peuvent produire des réactions d’hypersensibilité.

Ne pas employer avec des enfants de moins de 12 ans, ni avec des femmes allaitantes.

Ne pas employer avec des femmes enceintes, car peut provoquer un avortement.

•Travail TRAMIL31

L’extrait aqueux (décoction) de feuille fraîche lyophilisée, administré oralement à 10 souris NGP (5 mâles et 5 femelles), à des doses de 1 et de 2 g/kg/jour, 5 jours consécutifs par semaine, pendant 70 jours, n’a provoqué ni mort, ni signes de toxicité évidents durant le traitement ni les 14 jours d'observation suivant.

•Travail TRAMIL17

L’extrait aqueux (décoction) de feuille, administré oralement à la souris (10 g/kg), à une dose unique, n’a pas montré de signes externes de toxicité durant les 7 jours suivant le traitement.

•Travaux TRAMIL32,42

L’extrait aqueux (décoction30%), rendement 9 mg/mL, lyophilisé, de jeune feuille fraîche, a été administré voie orale (100, 1000, 5000 et 10000 mg de solides totaux/kg, dose unique), à la souris Balb/c (25 femelles et 25 mâles en groupes de 10), avec un groupe témoin négatif (eau). En observation constante les premières 24 heures et quotidienne durant 14 jours, il n'y a pas eu demortalité mais piloérection, diminution de l'activité et de l'excrétion fécale au cours des premières heures seulement, l'examen macroscopique des organes internes est resté normal. La décoctionn'est donc pas considérée comme toxique32.

Toutes conditions égales, la voie intrapéritonéalea provoqué une diminution de l'activité et piloérection, ainsi qu'aux doses les plus élevées: dyspnée, exophtalmie, cyanose, opacité de la cornée et contractions musculaires. La DL50 a été établie à 1673 mg/kg42.

•Travaux TRAMIL39-41

L’extrait aqueux (décoction30%), rendement 9 mg/mL, lyophilisé, de jeune feuille fraîche,voie intrapéritonéalle (200, 400, 600, 800 et 1000 mg de solides totaux/kg/jour/5 jours), à la sourisBalb/c, modèle de génotoxicitéde morphologie de la tête des spermatozoïdes, contrôle négatif (eau distillée) et positif (cyclophosphamide 20 mg/kg), n'a pas montré d'effet génotoxique39.

Le même extrait, mêmes voie et contrôles (200, 418 et 836 mg solides totaux/kg/jour/2 jours), sur 6 groupes mixtes de 10 sourisSwiss, n'a pas provoqué d'effet mutagénique, ni toxique selon le modèle sur moelle osseuse40.

Le même extrait,in vitro, (1, 10, 100 et 1000 mg de solides totaux/mL), modèle de génotoxicitésur Aspergillus nidulans D30, n'a pas montré d'effet toxique ni génotoxique41.

El extracto acuoso de hoja seca, administrado por vía oral (1-5 g/kg), a ratones (el original no dice cuantos), no mostró efecto tóxicos en la prueba de toxicidad aguda43.

L’extrait aqueux de feuille (100 mg/animal), de tige ou de racine (200 mg/animal), a été administré oralement au rat, le 3ème ou le 5ème jour après l’insémination, les animaux étant abattus le 14ème jour. Les extraits de racine et de feuille ont eu une action anti-implantation, et la tige a montré une action ovotoxique. Les contrôles ont reçu de l’eau distillée en volumes équivalents à ceux des extraits, et on a comptabilisé les corps jaunes, les implants viables et les réabsorptions33.

La DL50 de l’extrait hydroalcoolique de racine administré par voie orale au ratmâle a été supérieure à 1,27 g/kg34.

L’extrait hydroalcoolique (70%) de racine séchée, 1 mg (équivalent à 7,7 mg de racine séchée), appliqué sur peau de rat, n’a pas produit de réaction d’irritabilité au bout des 15 jours successifs de l’application28.

Le benzaldéhyde présent dans la racine et la tige peut causer des dermatites par contact35-36.

On ne dispose pas d’information garantissant l’innocuité de son emploi avec des enfants, ni avec des femmes allaitantes.

•Travail TRAMIL12

Sélection phytochimique préliminaire (racine)

alcaloïdes :

-

saponosides :

+

 

flavonoides :

-

polyphénols :

+

 

quinones :

-

tanins :

-

 

stéroïdes, terpénoïdes :

+

 

 

               

La plante entière contient des coumarines, de l’allantoïne, du pinitol, de l’alcool lignocérylique, de l’acide lignocérique, du lignocérate de lignocéryl et des triterpènes : acétate d’isoarborinol, cinnamate d’isoarborinol, ß-sitostérol et α-friedélenol13-14.

La racine contient des dérivés sulfurés : benzyl-hydroxy-éthyl-trisulfide, tritiolaniacine, dibenzil-trisulfide; des dérivés benzéniques : benzaldéhyde, acide benzoïque; nitrate de potassium et ß-sitostérol13-15.

La feuille contient de l’allantoïne, du nitrate de potassium, de l’alcool lignocérylique, du lignocérate de lignocéryl, de l’acide linoléique, de l’acide nonadécanoïque, de l’acide oléique, de l’acide palmitique et de l’acide stéarique15.

La branche contient de l’allantoïne, du N-méthyl-4-transméthoxyproline, du nitrate de potassium et de l’acide lignocéryque15. La tige contient du benzyl-hydroxy-éthyl-trisulfide, de la tritiolaniacine, du benzaldéhyde et de l’acide benzoïque13-15. Les inflorescences contiennent un carbohydrate particulier, le pinitol15.

•Travail TRAMIL16

La décoction de feuille lyophilisée administrée oralement à des souris (100 mg/kg, équivalant à 0,6 g de feuille fraîche/kg) sur modèle d’analgésie par assiette chaude et contorsions induites par acide acétique, n’a pas induit d’effet analgésique.

•Travaux TRAMIL17

L’extrait aqueux (décoction) de feuille, administré oralement au rat (6,25 g/kg), sur le modèle d’inflammation d’œdème de patte de rat induit par carragheenine, a montré une action anti-inflammatoire significative. Administré oralement à des souris (10 g/kg) sur le modèle de contorsions induites intrapéritonéalement par l'acide acétique, il a eu un effet analgésique significatif. Les doses ont été exprimées en grammes de plante séchée.

•Travail TRAMIL18

L’extrait aqueux lyophilisé de feuille fraîche, administré par voie orale au rat (100 mg/kg, équivalant à 0,6 g de feuille fraîche/kg), sur le modèle expérimental de pleurésie induite par carragheenine, de granulome induit par le coton et d’involution du thymus induite par adrénalectomie, n’a pas eu d’effet anti-inflammatoire.

•Travail TRAMIL19

L’extrait aqueux (décoction 9 mg/mL) de jeune feuille fraîche lyophilisée (0,1 à 1000 mg/mL), in vitro, n’a pas eu d’action antimicrobienne sur Staphylococcus aureus, Bacillus subtilis, Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa ni sur Candida albicans, ni sur les champignons Aspergillus nidulans et Trichophyton mentagrophytes. Le produit lyophilisé (0,1 mg/mL) a provoqué des contractions significatives du muscle lisse dans les préparations d’organe isolé (utérus, aorte et fundus gastrique de rat; iléon de cobaye et trachée de lapin). L’augmentation des contractions a été équivalente à celle induite par le potassium (11,4 µg/mL).

La quantité d'ions potassiumcontenue dans la décoction lyophilisée, correspond à285 mg/g (déterminée par spectrophotométrie d’absorption atomique).

•Travail TRAMIL20

L’extrait aqueux (décoction) de feuille fraîche lyophilisé, administré oralement à 10 souris NGP (5 mâles et 5 femelles) aux doses uniques de 1 et 2 g/kg, sur le modèle de vélocité de transit intestinal, n’a pas eu d'effet significatif.

L’extrait fluide hydroalcooliques à 30% de feuille séchée, aux concentrations de 0,135; 0,54; 1,075; 4,3 et 17,2 mg/mL, a montré une action antigiardiasique significative, qui a atteint 96,81% avec la plus forte concentration et 5,03% avec la plus faible, sur la croissance in vitro de Giardia lamblia, incubée à 37ºC pendant 48 heures – la concentration étant par la suite ajustée à 2 x 105 parasites/0,5 mL. La concentration moyenne inhibitrice (CI50) a été de 2,05 mg/mL21.

L’extrait aqueux de parties aériennesin vitro a été inactif sur Pseudomonas aeruginosa et surStaphylococcus aureus22, de même que sur Trichophyton sp. A une concentration de 1 mL/plaque il a été actif sur Epidermophyton floccosum23.

L’extrait hydroalcoolique (70%) de parties aériennesin vitro (100 mg/mL) a été inactif sur Plasmodium falciparum24. L’extrait aqueux (infusion) et l’extrait méthanolique de feuille et de tige in vitro (plaque d’essai) ont inhibé la réplication du virus de la diarrhée virale bovine (BVDV), mais n’ont pas été actifs sur le virus d’Herpes simplex type 1, ni sur le poliovirus type 1, ni sur l’adénovirus sérotype 7 et ni sur le virus de la stomatite vésiculaire type 125.

L’extrait éthanolique (60%) de feuille séchée in vitro n’a pas inhibéCandida albicans26.

Les extraits hydroalcooliques de feuille et de branche séchées administrés oralement à des souris (1 g/animal), ont diminué de 60% les niveaux de glucose sanguin, dans les mêmes conditions, la racine séchée a été inactive27.

L’extrait hydroalcoolique (70%) de racine (1 mg) équivalent à 7,7 mg de racine séchée, appliqué localement à des rats mâles, sur un modèle expérimental de granulome induit par coton et de dermatite induite par huile de coton, a mis en évidence une action anti-inflammatoire locale28.

L’extrait aqueux (décoction) de plante entière séchée (15 g/L ) filtré, a été administré à un groupe de patients atteints d’ostéoarthrite (200 mL/personne), aucun effet analgésique n’a été démontré29.

L’extrait aqueux de racine crue a eu un effet analgésique significatif sur les contorsions induites par acide acétique, acétylcholine ou solution saline hypertonique sur des souris, mais a été inactif sur des modèles d’assiette chaude ainsi que sur le réflexe consistant à retirer la queue plongée dans de l’eau chaude. Il n’a pas non plus causé d’effet dépressif sur le système nerveux central30.

Références :  

1 GIRON L, 1988 Encuesta TRAMIL (Costa atlántica). Centro Mesoamericano de Tecnología CEMAT, Guatemala, Guatemala.

2 WENIGER B, ROUZIER M, 1986 Enquête TRAMIL. Service Oecuménique d'Entraide SOE, Port au Prince, Haïti.

3 WENIGER B, 1987-88 Encuesta TRAMIL. enda-caribe, Santo Domingo, Rep. Dominicana.

4 Castillo D, Rodriguez S, de los Santos C, Belen A, 2003 Encuesta TRAMIL (región Este). Dep. de Botánica, Jardín Botánico Nacional, Santo Domingo, Rep. Dominicana.

5 CHARLES C, 1988 TRAMIL survey. Movement for Cultural Awareness MCA, Roseau, Dominica.

6 LAGOS-WITTE S, Tinoco R, Merlo V, 1996 Encuesta complementaria TRAMIL. Laboratorio de Histología Vegetal y Etnobotánica, Dep. de Biología, Universidad Nacional Autónoma de Honduras UNAH, Tegucigalpa, Honduras.

7 GOMEZ H, GAITAN R, DIAZ F, 2003 Encuesta TRAMIL (Norte del departamento de Bolívar). Grupo de Productos Naturales, Facultad de Ciencias Químicas y Farmacéuticas. Universidad de Cartagena, Cartagena de Indias, Colombia.

8 SOLIS P, CORREA M, GUPTA M, 1995 Encuesta TRAMIL (Comunidades afro-caribeñas). Centro de Investigaciones Farmacognósticas de la Flora Panameña CIFLORPAN, Facultad de Farmacia, Universidad de Panamá, Panamá, Panamá.

9 GERMOSEN-ROBINEAU L, GERONIMO M, AMPARO C, 1984 Encuesta TRAMIL. enda-caribe, Santo Domingo, Rep. Dominicana.

10 Castillo D, Rodriguez S, de los Santos C, Belen A, 2003 Encuesta TRAMIL (Zambrana, Cotuí). Dep. de Botánica, Jardin Botánico Nacional, Santo Domingo, Rep. Dominicana.

11 WHO, 1991 Pautas para la evaluación de medicamentos herbarios WHO/TRM/91.4 (original inglés). Programa de Medicina Tradicional, OMS, Ginebra, Suiza.

12 WENIGER B, SAVARY H, DAGUIHL R, 1984 Tri phytochimique de plantes de la liste TRAMIL. Laboratoire de chimie des substances naturelles, Faculté de Médecine et de Pharmacie, Université d'Etat d'Haïti, Port au Prince, Haïti.

13 HEGNAUER R, 1973 Chemotaxonomy der Pflanzen. Basel, Schweiz: Birkhauser Verlag. 6:882.

14 SEGELMAN F, SEGELMAN A, 1975 Constituents of Petiveria alliacea. Lloydia 38(6):537.

15 DE SOUSA JR, DEMUNER AJ, PINHEIRO JA, BREITMAIER E, CASSELS BK, 1990 Dibenzyl trisulphide and trans-N-methyl-4-methoxyproline fromPetiveria alliacea. Phytochemistry 29(11):3653-3655.

16 FURONES JA, MORON F, PINEDO Z, 1996 Ausencia de la acción analgésica de la Petiveria alliacea (anamu) en ratones. Rev Cubana Planta Med 1(1):16-18.

17 DEL CARMEN RIVAS C, JIMENEZ M, AYALA L, CARILLO C, CABRERA Y, 1988 Actividad anti-inflamatoria y analgésica dePetiveria alliaceae. Informe TRAMIL. Centro de Investigación y Desarrollo de Medicamentos (CIDEM), La Habana, Cuba.

18 FURONES JA, MORON F, PINEDO Z, 1996 Ausencia de actividad antiinflamatoria del extracto acuoso liofilizado de Petiveria alliacea (anamú) en ratas. Informe TRAMIL. Rev Cubana Planta Med 1(2):34-37.

19 Martinez MJ, Betancourt J, Lopez M, MorejOn Z, Fuentes V, MORON F, PINEDO Z, Boucourt E, 2001 Actividad antimicrobiana y sobre varias preparaciones de músculo liso, in vitro, de la decocción liofilizada de hoja de Petiveria alliacea.Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba.

20 GarcIa GM, Coto MT, GonzAlez CS, Pazos L, 1995 Velocidad del tránsito intestinal en ratones, del extracto acuoso de hoja fresca de Petiveria alliacea. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos LEBI, Escuela de Medicina, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

21 ECHEVARRIA A, TORRES D, 2001 Efecto de un extracto de Petiveria alliacea Lin sobre el crecimiento de Giardia lamblia in vitro. Rev Cubana Med Mil 30(3):161-165.

22 CACERES A, GIRON LM, ALVARADO SR, TORRES MF, 1987 Screening of antimicrobial activity of plants popularly used in Guatemala for the treatment of dermatomucosal diseases. J Ethnopharm20(3):223-237.

23 CACERES A, LOPEZ BR, GIRON MA, LOGEMANN H, 1991 Plants used in Guatemala for the treatment of dermatophytic infections. 1. Screening for the antimicotic activity of 44 plant extracts. J Ethnopharm 31(3):263-276.

24 SAUVAIN M, 1989 Etude de plantes antiparasitaires du plateau des Guyanes en Amazonie: antipaludiques et antileishmaniens (Thèse de Doctorat). Université Paris-Sud, Paris, France.

25 RUFFA MJ, PERUSINA M, ALFONSO V, WAGNER ML, SURIANO M, VICENTE C, CAMPOS R, CAVALLARO L, 2002 Antiviral activity of Petiveria alliacea against the bovine viral diarrhea virus. Chemotherapy 48(3):144-147.

26 CACERES A, JAUREGUI E, HERRERA D, LOGEMANN H, 1991 Plants used in Guatemala for the treatment of dermatomucosal infections. 1: Screening of 38 plant extracts for anticandidal activity. J Ethnopharm 33(3):277-283.

27 LORES RI, PUJOL MC, 1990 Petiveria alliacea L. (anamu). Study of the hypoglycemic effect. Med Interne 28(4):347-352.

28 GERMANO DH, CALDEIRA TT, MAZELLA AA, SERTIE JA, BACCHI EM, 1993 Topical anti-inflammatory activity and toxicity of Petiveria alliacea. Fitoterapia 64(5):459-467.

29 FERRAZ MB, PEREIRA RB, IWATA NM, ATRA E, 1991 Tipi. A popular analgesic tea. A double blind cross-over trial in osteoarthritis. Clin Exp Rheumatol 9(2):205-206.

30 LIMA TCM, MORATO GS, TAKAHASHI RN, 1991 Evaluation of antinociceptive effect of Petiveria alliacea (guiné) in animals. Mem Inst Oswaldo Cruz 86(suppl.2):153-158.

31 GarcIa GM, Coto MT, GonzAlez CS, Pazos L, 1996 Toxicidad sub-crónica en ratones, del extracto acuoso de hojas frescas de Petiveria alliacea. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos LEBI, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

32 GUERRA MJ, BETANCOURT J, LOPEZ M, MOREJON Z, BOUCOURT E, FUENTES V, MORON F, 2001 Toxicidad aguda (DL50) oral de la decocción de hojas jóvenes frescas de Petiveria alliaceaL.Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología. Facultad de Medicina Dr. Salvador Allende. Ciudad de La Habana, Cuba.

33 GUERRA MO, OLIVEIRA AB, MAIA JGS, PETERS VM, 1989 Alteraçäo do desenvolvimento embrionário de ratos após tratamento com extratos aquosos de diferentes orgäos de Petiveria alliacea. Bol Centro Biol Reprod 8:17-22.

34 GERMANO DHP, SERTIE JAA, BACCHI EM, 1995 Pharmacological assay of Petiveria alliacea. II. Oral anti-inflammatory activity and gastrotoxicity of a hydroalcoholic root extract. Fitoterapia 66(3):195-202.

35 REYNOLDS J Ed., 1996 Martindale: The extra pharmacopoeia. Evaluated information on the world’s drugs and medicines. 31st ed. London, England: The Royal Pharmaceutical Society. p1678.

36 BUDAVARI S Ed., 2001 The Merck Index: an encyclopedia of chemical, drugs, and biologicals. 30th ed. Whitehouse Station, USA: Merck & Co., Inc. p181.

37 ALBORNOZ A, 1993 Medicina tradicional herbaria. Caracas, Venezuela: Editorial Instituto Farmacoterápico Latino S.A. p298.

38 CARBALLO A, 1995 Cálculo de concentración y dosis de las drogas vegetales TRAMIL: Mensuraciones farmacognósticas y aproximaciones técnico-clínicas. Laboratorio provincial de producción de medicamentos, Sancti Spiritus, Cuba.

39 GUERRA MJ, BETANCOURT J, LOPEZ M, MOREJON Z, BOUCOURT E, FUENTES V, 2001 Genotoxicidad in vivo: ensayo de morfología de la cabeza del espermatozoide en ratones de decocción liofilizada de hojas frescas de Petiveria alliacea L.Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología. Facultad de Medicina Dr. Salvador Allende, Ciudad de La Habana, Cuba.

40 GUERRA MJ, BETANCOURT J, LOPEZ M, MOREJON Z, BOUCOURT E, FUENTES V. 2001 Genotoxicidad in vivo: ensayo de micronúcleos en médula ósea de decocción liofilizada de hoja fresca de Petiveria alliacea L. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología. Facultad de Medicina Dr. Salvador Allende, Ciudad de La Habana, Cuba.

41 GUERRA MJ, BETANCOURT J, LOPEZ M, MOREJON Z, BOUCOURT E, FUENTES V, 2001 Genotoxicidad in vitro: mediante el sistema de ensayo con Aspergillus nidulans de decocción liofilizada de hoja fresca Petiveria alliacea L. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología. Facultad de Medicina Dr. Salvador Allende, Ciudad de La Habana, Cuba.

42 GUERRA MJ, BETANCOURT J, LOPEZ M, MOREJON Z, BOUCOURT E, FUENTES V, 2001 Toxicidad aguda (DL50) intraperitoneal de la decocción liofilizada de hojas frescas de Petiveria alliaceaL.Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología. Facultad de Medicina Dr. Salvador Allende. Ciudad de La Habana, Cuba.

43 CACERES A, LOPEZ B, GONZALEZ S, BERGER I, TADA I, MAKI J, 1998 Plants used in Guatemala for the treatment of protozoal infections. I. Screening of activity to bacteria, fungi and American trypanosomes of 13 native plants. J of Ethnopharmacology 62(3):195-202.

Décharge

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