Persea americana

nom scientifique : 
Persea americana Mill.
Famille : 

Distribution géographique

Originaire d’Amérique tropicale, cultivée dans les zones tropicales et subtropicales.

Description botanique

Arbre fruitier pouvant atteindre 20 m, tête dense, arrondie ou allongée. Feuilles alternes, elliptiques à obovales, aiguës ou acuminées à la pointe, cunéiformes à arrondies à la base, penninervées. Panicules plus courtes que les feuilles, subterminales; fleurs parfaites, vert-jaunâtres; lobes du calice pubescents sur les deux surfaces. Fruit très variable, drupe généralement ovale, écorce verte, pulpe molle renfermant une seule grande graine.

Voucher(s)

Girón,245,CFEH

Longuefosse&Nossin,25,HAVPM

Medina,60,CICY

aménorrhée :

(et/ou abortif) : feuille ou fruit, décoction, voie orale1

toux :

  feuille, décoction, voie orale4

asthme :

  feuille, décoction, voie orale2

bronchite (expectorante) :

  feuille, décoction, voie orale2

infection urinaire :

  feuille, décoction, voie orale2

flatulence :

  feuille, décoction, voie orale3

Le fruit de Persea americana constitue un aliment de consommation humaine relativement répandu.

Contre l’aménorrhée, l’asthme, la bronchite, les flatulences, l’infection urinaire et la toux :

Préparer une décoction avec 20 grammes (3 cuillerées) de feuille hachée menu dans 1 litre (4 tasses) d’eau, faire bouillir au moins 10 minutes dans un récipient couvert. Filtrer, laisser refroidir et boire 1/2 à 1 tasse 3-4 fois par jour26.

Toute préparation médicinale doit être conservée au froid et utilisée dans les 24 heures.

Selon l’information disponible :

L’emploi contre l’aménorrhée est classé REC sur la base de l’emploi significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL, les études de toxicité, la validation et l’information scientifique publiée.

L’emploi contre l’asthme, la bronchite, la flatulence, l’infection urinaire et la toux est classé REC sur la base de l’emploi significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL et les études de toxicité.

Si l’état du patient se détériore, si l’asthme, la bronchite ou la toux durent plus de 5 jours, ou si l’infection urinairedure plus de 3 jours, consulter un médecin.

A cause des risques que représente l’interaction documentée avec la warfarine et avec des inhibiteurs de monoaminoxydase (IMAO), les personnes qui prennent ces médicaments doivent éviter l’ingestion de la décoction du fruit5.

Ne pas employer avec des enfants de moins de 3 ans, ni avec des femmes allaitantes.

Ne pas employer avec des femmes enceintes, car peut provoquer un avortement.

•Travail TRAMIL22

L’extrait aqueux de fruit et de feuille administré par voie orale à la souris (12,5 g/kg), n’a pas montré de signes de toxicité évidents pendant les 10 jours d’observation. La DL50 de l’extrait administré par voie intrapéritonéale a été de 8,828 ± 3,729 g/kg.

L’extrait aqueux de fruit et feuille frais (500 mg/mL) administré oralement à la souris (18,75, 12,5 et 6,25 mL/kg poids de souris/jour) pendant 30 jours, n’a pas provoqué de signes de toxicité évidents pendant les 40 jours d’observation22.

•Travail TRAMIL23

L’extrait aqueux (décoction) de feuille fraîche, lyophilisé et administré oralement à 20 souris (10 mâles et 10 femelles) de souche NGP (5 g/kg/jour) pendant 5 jours, n’a provoqué ni mort ni signes de toxicité évidentsdurant les 7 jours d'observation suivant le traitement.

•Travail TRAMIL27

La feuille fraîche pilée-froissée (0,6 g) a été appliqué en patch de 6 cm2 sur la peau du lapin New Zealand mâle. Le patch a été retiré après 4 heures et les lectures à la recherche d'œdème et d'érythème après 24, 48 et 72 heures ont été négatives.

L’extrait aqueux de feuille fraîche, administré par voie orale et intrapéritonéale à la souris (1-10 g/kg) n’a provoqué ni mort ni signes de toxicité évidents durant les 24 heures d’observation suivant le traitement20.

La feuille fraîche administrée à une chèvre allaitante alimentée avec plus de 20g/kg, a provoqué des lésions sur les glandes mammaires et une réduction de la production de lait24.

La feuille fraîche composant l’alimentation de 21 moutons, a provoqué des problèmes respiratoires et cardiaques; leur autopsie a mis en évidence des lésions du myocarde25.

La consommation du fruit par des personnes suivant une thérapie anticoagulante avec de la warfarine, a provoqué une diminution de l’effet de ce médicament. L’association du fruit à la prise de médicaments inhibiteurs de la monoaminoxydase (IMAO) a aussi provoqué l’apparition de crises d’hypertension5.

On ne dispose pas d’information garantissant l’innocuité de son emploi médicinal avec des enfants, ni avec des femmes enceintes ou allaitantes.

 

La feuille a été amplement étudiée et contient, entre autres composants, de l’huile essentielle : estragol (80%)6, camphène, carvone, eugénol, méthyléther, limonène, ß-myrcène, ß-cymène, α et ß pinène entre autres7; des flavonoïdes : afzéline, guaijavérine, hypéroside, juglanine, quercétine, quéricitrine, iso-quercitrine8, apigénine, astragaline9 et dérivés de procyanidine10; des coumarines : scopolétine9; des alcanes11.

La pulpe du fruit contient des sesquiterpènes : acide dihydro-phaséique et dérivés12; des carbohydrates : glucose, fructose, perséitol et mannoheptulose13.

La graine contient de l’huile dont les principaux composés sont : vitamine A, D-3, α-tocophérol, cholestérol14.

Analyse proximale pour 100 g de fruit15 : calories : 167; eau : 74%; protéines : 2.1%; lipides : 16.4%; glucides : 6.3%; fibres : 1.6%; cendres : 1.2%; calcium : 10 mg; phosphore : 42 mg; fer : 0.6 mg; sodium : 4 mg; potassium : 604 mg; carotène : 174 µg; thiamine : 0.11 mg; riboflavine : 0.20 mg; niacine : 1.60 mg; acide ascorbique : 14 mg.

•Travail TRAMIL16

La décoction de feuille séchée in vitro (2 mg/mL), n’a pas provoqué l’inhibition de micro-organismes responsables d'infections urinaires : Escherichia coli 25922, Pseudomonas aeruginosa ATCC27853,Salmonella typhi ATCC14028, Staphylococcus aureus ATCC6558, Candida albicans 10231 ni Cryptococcus neoformans C13.

•Travail TRAMIL17

La décoction (10 minutes, neutralisé chimiquement à pH7) de fruit entier et de feuille, in vitro (16,66 mg/mL), sur un modèle expérimental d’utérus de souris en période oestrale, doses non cumulatives, a produit une réponse utérotonique significative (p < 0,01).

•Travail TRAMIL18

L’extrait aqueux (décoction) de feuille fraîche, lyophilisé, in vitro (14,28 mg/mL), sur anneaux de trachée isolée de cobaye, avec contractures induites par chlorure de potassium (80 millimoles), n’a pas montré d’effet relaxant.

•Travail TRAMIL19

L’extrait aqueux (décoction) de feuille fraîche, lyophilisé, en concentration de 66,67 mg/mL, administré oralement (1 g/kg), à 20 souris de souche Hsd:ICR(CD-1) (10 mâles et 10 femelles), n’a pas modifié la vélocité du transit intestinal après comparaison avec le groupe témoin qui a reçu de l’eau distillée et désionisée (0,5 mL).

Trabajo TRAMIL28 (sera traduit dans la 3è éd.)

La decocción 30% de hoja fresca, vía oral (dosis 1, 5 y 10 g de material vegetal/kg), modelos de contorciones inducidas por ácido acético (0.75%, 0.1 mL/10 g) intraperitoneal y retirada de la cola provocada por inmersión en agua caliente (55oC), ratones OF-1 machos (20-25 g), 10 animales/grupo. La decocción (1, 5 y 10 g/kg) mostró actividad analgésica significativa en el modelo de contorciones y solamente en dosis de 5 g/kg en el modelo de retirada de la cola.

La décoction de feuille fraîche(235 g/L pendant 1 h) lyophilisée à 40°C puis reconstituée dans de l’eau distillée (400 mg/mL), administrée oralement à des souris (200–1600 mg/kg), sur les modèles de douleur induite par phormaline (1% s.c.), et de contorsions par acide acétique (0,6% v/v; 10 mL/kg) et de plaque chaude (56°C), a inhibé la réponse douloureuse, de manière dose-dépendante. Dans le modèle d’inflammation sur l’oedème provoqué par carragheenine (1% p/v, 0,l mL) sur patte de rat, un effet anti-inflammatoire dose-dépendante a été démontré20.

On attribue à l’huile et à l'extrait (2 mg/mL) de pulpe de fruit une activité stimulante phagocytaire21.

Références :  

1 GERMOSEN-ROBINEAU L, GERONIMO M, AMPARO C, 1984 Encuesta TRAMIL. enda-caribe, Santo Domingo, Rep. Dominicana.

2 GIRON L, 1988 Encuesta TRAMIL (Costa atlántica). Centro Mesoamericano de Tecnología CEMAT, Guatemala, Guatemala.

3 LONGUEFOSSE JL, NOSSIN E, 1990-95 Enquête TRAMIL. Association pour la valorisation des plantes médicinales de la Caraïbe AVPMC, Fort de France, Martinique.

4 MENDEZ M, MEDINA ML, DURAN R, 1996 Encuesta TRAMIL. Unidad de recursos naturales, Centro de Investigación Científica de Yucatán CICY, Mérida, México.

5 CANIGUERAL S, VILA R, RISCO E, PEREZ F, PORTILLO A, FREIXA B, MILO B, VANACLOCHA B, RIOS JL, MORALES MA, ALONSO JR, BACHILLER LI, PERIS JB, STUBING G, 2002 Persea americana. Vademecum de Fitoterapia, Editorial Masson, Barcelona, España, Feb. 26, 2003. URL: http://www.masson.es/book/fitoterapia.html

6 BERGH BO, SCORA RW, STOREY WB, 1973 Comparison of leaf terpenes in Persea subgenus persea. Bot Gaz (Chicago) 134:130-134.

7 KING JR, KNIGHT RJ, 1992 Volatile components of the leaves of various avocado cultivars. J Agric Food Chem 40(7):1182-1185.

8 DE ALMEIDA AP, MIRANDA MMFS, SIMONI IC, WIGG MD, LAGROTA MHC, COSTA SS, 1998 Flavonol monoglycosides isolated from the antiviral fractions of Persea americana (Lauraceae) leaf infusion. Phytother Res 12(8):562-567.

9 MERIÇLI F, MERIÇLI AH, YILMAZ F, YÜNCÜLER G, YÜNCÜLER O, 1992 Flavonoids of avocado (Persea americana) leaves. Acta Pharm Turc 34(2):61-63.

10 BATE-SMITH EC, 1975 Phytochemistry of proanthocyanidins. Phytochemistry 14(4):1107-1113.

11 MURAKOSHI S, ISOGAI A, CHANG CF, KAMIKADO T, SAKURAI A, TAMURA S, 1976 The effects of two components from avocado leaves (Persea americana) and related compounds on the growth of silkworm larvae, Bombyx mori. Nippon Oyo Dobutsu Konchu Gakkaishi 20:87-91.

12 HIRAI N, KOSHIMIZU K, 1983 A new conjugate of dihydrophaseic acid from avocado fruit. Agr Biol Chem 47(2):365-371.

13 WILSON C, WILSON III CW, SAW PE, NAGY S, 1979 Analysis of monosaccharides in avocado by HPLC. Liq Chromat Anal Food Beverages 1:225-236.

14 SARDI JC, TORRES OA, 1978 Study on avocado (Persea americana) oil. Arch Bioquim Quim Farm 20:45-49.

15 DUKE JA, ATCHLEY AA, 1986 Handbook of proximate analysis tables of higher plants. Boca Raton, USA: CRC Press. p324.

16 CACERES A, GONZALEZ S, GIRON L, 1998 Demostración de la actividad antimicrobiana de plantas TRAMIL en base a los usos populares en la cuenca del Caribe. Informe TRAMIL. Laboratorio de productos fitofarmacéuticos Farmaya y Facultad de ciencias químicas y farmacia, Universidad de San Carlos, Guatemala, Guatemala.

17 HERRERA J, 1986 Determinación de actividades biológicas de vegetales utilizados en medicina tradicional. Informe TRAMIL. Dep. de Farmacología, Facultad de Salud, Universidad del Valle, Cali, Colombia.

18 GarcIa GM, Coto MT, GonzAlez CS, Pazos L, 1999 Actividad bronquial del extracto acuoso de hoja fresca de Persea americana. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos LEBI, Escuela de Medicina, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

19 PAZOS L, COTO T, GONZALEZ S, QUIROS S, 2003 Tránsito intestinal, en ratones, del extracto acuoso de hojas frescas de Persea americana. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

20 ADEYEMI OO, OKPO SO, OGUNTI OO, 2002 Analgesic and anti-inflammatory effects of the aqueous extract of leaves of Persea americana Mill Lauraceae. Fitoterapia 73(5):375-380.

21 MIWA M, KONG ZL, SHINOHARA K, WATANABE M, 1990 Macrophage stimulating activity of foods. Agric Biol Chem 54(7):1863-1866.

22 HERRERA J, 1988 Determinación de actividades biológicas de vegetales utilizados en medicina tradicional. Informe TRAMIL. Laboratorio de fitofarmacología, Dep. de Farmacología, Facultad de Salud, Universidad del Valle, Cali, Colombia.

23 GarcIa GM, Coto MT, GonzAlez CS, Pazos L, 2000 Toxicidad aguda en ratones, del extracto acuoso de hojas frescas de Persea americana. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos LEBI, Escuela de Medicina, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

24 CRAIGMILL AL, SEAWRIGHT AA, MATTILA T, FROST AJ, 1989 Pathological changes in the mammary gland and biochemical changes in milk of the goat following oral dosing with leaf of the avocado (Persea americana). Aust Vet J 66(7):206-211.

25 GRANT R, BASSON PA, BOOKER HH, HOFHERR JB, ANTHONISSEN M, 1991 Cardiomyopathy caused by avocado (Persea americana Mill.) leaves. J S Afr Vet Assoc 62(1):21-22.

26 ALONSO J, 1998 Tratado de fitomedicina. Bases clínicas y farmacológicas. Buenos Aires, Argentina: ISIS ediciones SRL. p185.

27 LOPEZ M, MARTINEZ MJ, MOREJON Z, BOUCOURT E, FUENTES V, MORON F. 2005 Irritabilidad dérmica primaria de hoja fresca machacada de Persea americana Mill. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Medicina “Dr. Salvador Allende”, Cerro, C. Habana, Cuba.

28 MORON FJ, GARCIA AI, VICTORIA MC, MOREJON Z, LOPEZ M, BACALLAO Y, FUENTES V, 2008 Acción analgésica de la decocción de hojas frescas de Persea americana Mill. (aguacate) en ratones. Trabajo TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología. Universidad de Ciencias Médicas de La Habana.

Décharge

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