Psidium guajava

nom scientifique : 
Psidium guajava L.
Famille : 

Distribution géographique

Originaire d’Amérique tropicale, naturalisée dans les régions tropicales et subtropicales de l’Ancien Monde.

Description botanique

Arbre ou arbuste pouvant atteindre 10 m de haut, écorce squameuse. Feuilles opposées à court pétiole, elliptiques à oblongues, subcoriaces, avec nervures visiblement imprimées sur la partie supérieure, proéminentes sur l’inférieure. Fleurs blanches, solitaires ou en groupes de 2 à 3, sur fins pédoncules; nombreuses étamines. Fruit comestible, arrondi ou piriforme, jaune, de 3 à 6 cm de diamètre.

Voucher(s)

Delens,23,VEN

Gimenez,275705-33,VEN

Girón,267,CFEH

Jiménez,41,JBSD

Medina,41,CICY

Longuefosse&Nossin,32, HAVPMC

Pinzón,21898,CUVC

Espinosa,6178,FLORPAN

Delaigue,24,NHTT

Soto,45862,CR

Fuentes,4754,ROIG

vertiges et faiblesse éthyliques (gueule de bois) :

  feuille, décoction, avec du sucre et du sel, voie orale en association fréquente avec Allium sativum et Bunchosia glandulosa1

crise de nerf :

  feuille, écrasée, en inhalation2

diarrhée :

feuille, mâchée, voie orale5,60

éruptions cutanées :

  feuille fraîche, décoction, en bain, seule ou en association avec Hamelia patens et Punica granatum, on l’utilise aussi en association avec Spondias purpurea11

diarrhée :

écorce de tige fraîche, décoction, voie orale62-64

vomissement :

  boutons, décoction ou infusion, voie orale1

diarrhée :

  fruit, naturel, comme comestible3,5

diarrhée :

  fruit, jus, avec du sel ou du sucre, voie orale7

crise de nerf :

  feuille, décoction avec du sel et du sucre, voie orale, et friction en association fréquente avec Annona muricata1

diarrhée :

  feuille, décoction ou infusion (parfois avec du sel ou du sucre), voie orale1-2,6-7,9

diarrhée :

boutons et pousses foliaires, infusion, voie orale4,12,60,71-72

diarrhée :

fleur et pousse, décoction ou infusion, voie orale5,8,10

Le fruit de Psidium guajava constitue un aliment de consommation humaine relativement répandu.

Contre la diarrhée et l’état éthylique (gueule de bois) :

Préparer une décoction ou une infusion avec 5 grammes de feuille (1-2 petites cuillerées) dans 250 mL (1 tasse) d’eau. Pour la décoction, faire bouillir pendant au moins 10 minutes, dans un récipient couvert. Pour l’infusion, verser l’eau bouillante sur les 5 grammes de feuille avant de couvrir. Filtrer, laisser refroidir et boire 1 tasse 4-5 fois par jour59.

Contre les crises de nerfs, les vomissements et les éruptions cutanées :

Se référer à l'usage rapporté au chapitre Emplois traditionnels significatifs TRAMIL, les informations scientifiques disponibles ne permettant pas de définir un dosage plus précis.

Toute préparation médicinale doit être conservée au froid et utilisée dans les 24 heures.

Selon l’information disponible :

L’emploi contre les vomissements est classé REC sur la base de l’usage significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL et les études de toxicité.

Si l’état du patient se détériore, ou si les vomissements durent plus de 2 jours, consulter un médecin.

L’emploi contre les crises de nerfs et la diarrhée est classé REC sur la base de l’usage significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL, les études de toxicité, la validation et l’information scientifique publiée.

Si l’état du patient se détériore, ou si les crises de nerfs durent plus de 7 jours, consulter un médecin.

Si l’état du patient se détériore, ou si la diarrhée dure plus de 3 jours chez un adulte (plus de 2 jours chez un enfant), consulter un médecin. En cas de diarrhée, ce remède est considéré comme un complément à la thérapie de réhydratation orale.

L’emploi contre les éruptions cutanées et l’état éthylique (gueule de bois) est classé REC sur la base de l’expérience traditionnelle de l’usage (OMS/WHO)13 documenté par son emploi significatif dans les enquêtes TRAMIL.

La littérature scientifique ne donne pas d’information permettant de valider l’emploi de la feuille en association avec Allium sativum et Bunchosia glandulosa contre l’état éthylique (gueule de bois).

Si l’état du patient se détériore, ou si les éruptions cutanées durent plus de 5 jours, consulter un médecin.

Toute application locale doit se conformer à de strictes mesures d’hygiène, pour éviter la contamination ou une infection supplémentaire.

Ne pas employer avec des enfants de moins de 3 ans, ni avec des femmes enceintes ou allaitantes.

•Travaux TRAMIL53-54

L’extrait aqueux (0,012, 0,127, 0,636 et 1,273 mg/mL) et l’extrait hexanique (0,053, 0,265 et 0,53 mg/mL) de feuille séchée in vitro sur le modèle d’induction de ségrégation somatique à court terme sur Aspergillus nidulans n’ont pas montré d’effet génotoxique.

•Travail TRAMIL55

La feuille séchée en poudre avec administration unique par voie orale à la souris (500, 1000 et 2000 mg/kg) sur le modèle d’induction de micronoyaux dans la moelle osseuse, n’a pas eu d’effet génotoxique.

•Travail TRAMIL56

La DL50 de feuille séchée en poudre administrée oralement à la souris a été supérieure à 2 g/kg.

•Travail TRAMIL57

La feuille séchée en poudre avec administration unique par voie orale au rat (2 g/kg) n’a pas provoqué la mort ni de signes évidents de toxicité pendant les 14 jours d’observation, et n’a pas mis de changement en évidence lors des études histopathologiques.

Trabajo TRAMIL74 (sera traduit dans la 3è éd.)

La decocción al 50% de hoja fresca, vía oral (dosis promedio de 906,0 mg/kg/24 h, durante 5 días), a rata Wistar (10 animales por grupo, 5 de cada sexo), el control recibió agua destilada a otras 6 ratas de las mismas características (3 de cada sexo), modelo de toxicidad a dosis repetida de LEBi, se observaron constantemente en las primeras 12 horas y después cada 24 durante 14 días. No se presentaron muertes u otras manifestaciones de signos de toxicidad en los grupos experimentales tratados solo una disminución de peso en la primera semana en una hembra lo que se recuperó en la semana sigiuente. En la necropsia no se evidenció daño de ningún órgano por lo que el extracto estudiado no presenta toxicidad en este ensayo.

•TravailTRAMIL61

L'extrait aqueux (décoction 4,78%) lyophilisé d'écorce de tige fraîche, à concentration de 333,33 mg/mL d'eau, administré par voie orale (1 g/kg/jour) à la souris Hsd:ICR de 27,14 ± 2,69 g (9 mâlesy 9 femelles)durant 5 jours consécutifs suivis de 12 jours d'observation, n'a pas provoqué de mortalité ni aucun signe de toxicité, selon le protocole EPA.OPPTS.870.3100. Le groupe témoin constitué de 10 souris de mêmes caractéristiques à reçu de l'eau (0,3 mL/20 g de poids corporel). L'autopsie n'a montré aucune altération macroscopique.

•TravailTRAMIL70

L'extrait aqueux (décoction 4,78%) lyophilisé de feuille fraîche, à concentration de 500 mg/mL d'eau, administré par voie topique 4 heures par jour pendant 5 jours consécutifs sur la peau saine rasée (0,5 mL en patchs de 5 cm2) du dos de 3 lapins New Zealand, n’a pas montré de signes évidents d’irritabilité dermique, ni oedème, ni érythème durant l'essais ni les 11 jours d'observation qui ont suivi. Le protocole utilisé a été EPA 870.2500 et le contrôle aqueux contra latéral.

L’extrait méthanolique, (5 mg/plaque) sur les modèles de Salmonella typhymurium TA-98 et Escherichia coli WP-2, contre la toxicité induite par radiations ultraviolettes et mutagènes expérimentaux a eu une action antimutagène58.

On ne dispose pas d’information garantissant l’innocuité de son emploi médicinal avec des enfants, ni avec des femmes enceintes ou allaitantes.

•Travail TRAMIL14

La décoction de feuille récoltée à Panama n’a pas permis de détecter la présence de quercétine, on a seulement trouvé de la quercétrine à une concentration de 0,0059 mg/mL (équivalents 0,0044 mg/mL de quercétine). En revanche, on a détecté dans l’extrait méthanolique la présence de quercétine à une concentration de 0,0174 mg/mL, et celle de quercétrine à une concentration de 0,0549 mg/mL.

Le fruit contient de l’huile essentielle : ß-bisabolène, δ-cadinène, caryophilène et dérivés, α-humulène, α et ß-sélinène15-16, curcumène, farnésène15; des flavonoïdes : guaijavérine, quercétine17, leucocyanidine17; des triterpènes : α et ß-amyrine, et dérivés, lupéol, acides arjunolique, asiatique, proto-bassique, brahmique, maslinique, ursolique18 et oléanolique18-19; des benzénoïdes : benzaldéhyde16,18, acides diphénique, acide gallique17, acétate de 2-phénéthyl, p-méthyl-styrène, toluène16; des composés sulfurés : benzothiazol, 2-méthyl-thio-benzothiazol, diméthyl disulfure, diméthyl trisulfure, diisopropyl-disulfure, 6-mercapto-hexan-1-ol, penthane-2-thiol, diméthyl-sulfone, 5-étoxy-thiazol, 2-éthyl-thiophène, 2-méthyl-thiophène, 3-méthyl-thiophène20, stéroïdes18-19, lipides; des coumarines17,22; oxygène hétérocyclique16; des alcanes16,20-21; des alquènes16.

La fleur contient des flavonoïdes : guaijavérine, quercétine17,23, leucocyanidine17, des triterpènes : acide oléanolique23.

La feuille contient des benzénoïdes : amritoside acide ellagique24, acide gentisique25, pendunculagine26, flavonoïdes : guaijavarine, hypéroside27, guaijavérine, leucocyanidine24, procyanidine B-1, B-2 et B-328, quercétine24,29, iso-quercétine, quercétin-3-O-gentiobioside, quercitrine27, tanins : casuarinine30, guavine A31, B28, C et D31, pédunculagine, stachyurine, strychtinine, iso- strychtinine, télimagrandine I30, triterpènes : acides maslinique, oléanolique et ursolique32, monoterpènes : α-pinène33.

L’écorce contient des tanins : acutissimine A et B, castalagine, casuarinine, eugénigrandine A, grandinine, guajavine, guajavine B, mongolicaïne A, pédunculagine, psidinine A, B et C, psiguavine, acides valolaginique et vescalagine; des flavonoïdes : (+) catéchine, (+) gallocatéchine, procyanidine B-1, prodelphinidine B-1, leucocyanidine34; des benzénoïdes : 3-4-5-triméthoxy-1-O-ß-D-(2'-6'-di-O-galloïl)-glucopyranoside-phénol35, acide 3-3'-di-O-méthyl-ellagique, acide 3-O-méthyl-ellagique22.

L’écorce de la tige contient des benzénoïdes : amritoside, acide ellagique24; des flavonoïdes; des tanins28.

Le bois contient des benzénoïdes : acide gallique, amritoside triterpènes : acide oléanolique36, flavonoïdes : leucocyanidine34,36, quercétine36.

La racine contient des triterpènes : acide arjunolique37, benzénoïdes : acide gallique, galate d’éthyle, 2-3-4-6-tétra-O-galloïl-glucose, hexagalloïl-glucose, flavonoïdes : leucocyanidine, leucocyanine, quercétine, stéroïdes : ß-sitostérol, tanins38.

Analyse proximale pour 100 g de fruit39 : calories : 69; eau : 80,6%; protéines : 1%; lipides : 0,4%; glucides : 17,3%; fibres : 5,6%; cendres : 0,7%; calcium : 15 mg; phosphore : 24 mg; fer : 0,7 mg; sodium : 4 mg; potassium : 291 mg; carotène : 75 µg; thiamine : 0,05 mg; riboflavine : 0,04 mg; niacine : 1,10 mg; acide ascorbique : 132 mg.

Analyse proximale pour 100 g de feuille séchée39 : eau : 0%; protéines : 11,7%; lipides : 8,7%; glucides : 71,9%; fibres : 16,1%; cendres : 7,7%; calcium : 1340 mg; phosphore : 160 mg.

•Travaux TRAMIL40-41

La teinture de feuille (20 g/100 mL d’éthanol 70% v/v), dissoute dans 30 mL d’eau (10 mL toutes les 8 heures), administrée oralement à des êtres humains qui présentaient des symptômes de diarrhée aiguë simple, a augmenté significativement le nombre de patients guéris au bout de 24, 48 et 72 heures, par rapport au contrôle.

•Travail TRAMIL42

L’extrait éthanolique (80%) de feuille, obtenu par percolation et dégraissé à l’éther de pétrole, administré oralement (50, 100 et 300 mg/mL) à des souris, en employant le modèle expérimental d’activité motrice par mesure des déplacements horizontaux (équipe Varimex), a provoqué une diminution significative (p < 0,001) dose-dépendante de l’activité motrice. Cette diminution s’est maintenue au cours des 90 minutes ayant suivi l’administration. Les doses ont été exprimées en poids de plante séchée.

•Travail TRAMIL43

L’extrait hydroalcoolique (40%) de feuille séchée (107 mg/mL), in vitro, (100 L/puits) sur le modèle de diffusion sur plaque d’agar-agar, a eu un pouvoir inhibiteur inférieur à 50% par rapport aux contrôles sur la croissance de Staphylococcus aureus ATCC15008,Bacillus subtilis ATCC6633,Escherichia coli ATCC25922 et Pseudomonas aeruginosa ATCC142077. Cet extrait n’a pas eu d’effet sur Candida albicans ATCC10231.

•Travail TRAMIL44

La teinture de feuille (20 g/100 mL d’éthanol 70% v/v), administrée oralement à la souris mâle Swiss, (200, 400 et 800 mg de drogue/kg), a diminué significativement le transit intestinal, selon une action dose dépendante.

•Travail TRAMIL68

L'extrait aqueux (décoction 4,78%) lyophilisé d'écorce de tige fraîche, concentration 333.33 mg/mL d'eau, a été administré par voie orale(1 g/kg/jour), à 8 souris Hsd:ICR(CD-1), (4 mâles et 4 femelles de 24,3 ± 1,5 g), à jeun depuis 6 heures. Le groupe témoin de mêmes caractéristiques a reçu de l'eau distillée (0,3 mL/20 g de poids corporel), le contrôle positif de la piridostigmine (3,5 mg/kg) et le contrôle négatif de l'atropine (50 mg/kg). Selon la méthode de Wei-Wei Zhang et al.69, le charbon actif a servi de marqueur de la vitesse du transit intestinal, mesuré une heure après l'administration de l'extrait, sans qu'il soit observé de modification statistiquement significative.

L’extrait aqueux de feuille a été actifin vitro sur Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa, Sarcina lutea, Serratia marcescens, Shigella flexneri, Staphylococcus albus etS. aureus45 ainsi que sur des souches d’Epidermophyton floccosum et deCandida albicans46.

L’extrait aqueux de feuille séchée (40 mg/mL) a montré une activité contre Staphylococcus aureus etS. Epidermidis47.

L’extrait aqueux (8 mg/mL) a inhibé la croissancein vitro de Staphylococcus aureus et de S. epidermidis, suivant la méthode de numération totale sur plaques.Ce même extrait a inhibé la croissance de Staphylococcus aureus, de S. epidermidis et de S. Typhimurium47, suivant la méthode de turbidimétrie47.

L’extrait aqueux (40 mg/mL) de feuille et de fruit, suivant la méthode de zones d’inhibition de disque, a été actif in vitro sur Staphylococcus aureus 1-048102 et 3-04810747.

L’extrait de feuille (6,5 mg/mL), suivant la méthode de numération totale sur plaques et turbidimétrie a inhibé in vitro neuf souches de Staphylococcus aureus. L’extrait aqueux de fruit (6,5 mg/mL) n’a pas exercé d’action significative47.

La teinture de feuille in vitro a été inactive face à Neisseria gonorrhoeae et Vibrio cholerae48.

L’extrait aqueux de feuille, in vitro, sur le modèle d’iléon isolé de cobaye (1 mg/mL) a montré une activité spasmolytique49.

L’extrait aqueux de feuille (décoction), administré oralement au rat (10 mL/kg) a diminué significativement le transit intestinal51.

La feuille en capsules de 500 mg, (standardisation de flavonoïdes, quercétine 1 mg/500 mg), administrée oralement (1 capsule toutes les 8 heures pendant 3 jours), à des patients adultes atteints de diarrhée aiguë a diminué significativement la durée des douleurs abdominales dans un essai clinique réalisé de manière aléatoire et en double-aveugle52.

Les extraits aqueux et méthanolique d'écorce (45 mg/mL, 0,1 mL/plato) ont été actifs in vitrocontreBacillus subtilis, Staphyllococcus aureus, Escherichia coli etPseudomonas aeruginosa66.

L'extrait aqueux (décoction) d'écorce de tige a été active in vitro contreEntamoeba histolytica (CIM < 10 µg/mL). Le même extrait, à concentration de 80 µg/mL en bain d'organe, a inhibé à plus de 70% les contractions d'ileum isolé de cobaye provoquées par l'acéthylcholine ou le chlorure de potassium67.

Le jus de fruit administré par voie intrapéritonéale à la souris (1 g/kg), sur le modèle de diabète induit par l'alloxane, a produit un effet hypoglycémiant moins fort et moins durable que la chlorpropamide et le metformin50.

Références :  

1 GERMOSEN-ROBINEAU L, GERONIMO M, AMPARO C, 1984 Encuesta TRAMIL. enda-caribe, Santo Domingo, Rep. Dominicana.

2 WENIGER B, 1987-88 Encuesta TRAMIL. enda-caribe, Santo Domingo, Rep. Dominicana.

3 HERRERA J, 1994 Encuesta TRAMIL (Costa atlántica). Laboratorio de fitofarmacología, Departamento de Farmacología, Facultad de Salud, Universidad del Valle, Cali, Colombia.

4 CHARLES C, 1988 TRAMIL survey. Movement for Cultural Awareness MCA, Roseau, Dominica.

5 EDOUARD JA, 1992 Enquête TRAMIL. Lycée agricole, Baie-Mahault, Guadeloupe.

6 GIRON L, 1988 Encuesta TRAMIL (Costa atlántica). Centro Mesoamericano de Tecnología CEMAT, Guatemala, Guatemala.

7 WENIGER B, ROUZIER M, 1986 Enquête TRAMIL. Service Oecuménique d'Entraide SOE, Port au Prince, Haïti.

8 LONGUEFOSSE JL, NOSSIN E, 1990-95 Enquête TRAMIL. Association pour la valorisation des plantes médicinales de la Caraïbe AVPMC, Fort de France, Martinique.

9 DELENS M, 1990-92 Encuesta TRAMIL. Centro al Servicio de la Acción Popular CESAP, Caracas, Venezuela.

10 MARCELLE G, 1996 TRAMIL survey. Produce chemist laboratory, Ministry of Agriculture, St George's, Grenada.

11 MENDEZ M, MEDINA ML, DURAN R, 1996 Encuesta TRAMIL. Unidad de recursos naturales, Centro de Investigación Científica de Yucatán CICY, Mérida, México.

12 SolIs PN, Espinosa A, De Gracia J, MartInez L, Gupta MP, 2003 Encuesta TRAMIL (Emberá-Wounaann). Centro de Investigaciones Farmacognósticas de la Flora Panameña, Facultad de Farmacia, Universidad de Panamá, Panamá, Panamá.

13 WHO, 1991 Pautas para la evaluación de medicamentos herbarios WHO/TRM/91.4 (original inglés). Programa de Medicina Tradicional, OMS, Ginebra, Suiza.

14 Solis PN, Olmedo D, Buitrago de Tello RE, Gupta MP, 2000 Estudio fitoquímico y toxicológico de algunas plantas TRAMIL. Informe TRAMIL. Centro de Investigaciones Farmacognósticas de la Flora Panameña CIFLORPAN, Facultad de Farmacia, Universidad de Panamá, Panamá, Panamá.

15 WILSON CW, SHAW PE, 1978 Terpene hydrocarbons from Psidium guajava. Phytochemistry 17:1435-1436.

16 MACLEOD AJ, DE TROCONIS NG, 1982 Volatile flavour components of guava. Phytochemistry 21(6):1339-1342.

17 MISRA K, SESHADRI TR, 1968 Chemical components of the fruits of Psidium guajava. Phytochemistry 7:641-645.

18 CHIANG H, LEE S, GUO S, 1986 Active principles of hypoglycemic effect from Psidium guajava. Part II. Asian J Pharm Suppl 6(8):58.

19 VARSHNEY I, BADHWAR G, KHAN A, SHRIVASTAVA A, 1971 Saponins and sapogenins of Sesbania grandiflora seeds, Albizzia lebbek pods and Psidium guajava fruits. Indian J Appl Chem 34:214.

20 BASSOLS F, DEMOLE EP, 1994 The occurrence of pentane-2-thiol in guava fruit. J Essent Oil Res 6(5):481-483.

21 DAVIS P, MUNROE K, SELHIME A, 1976 Laboratory Proc Fla State Hort Soc bioassay of volatile naturally occurring compounds against the Caribbean fruit fly. p174.

22 LOWRY JB, 1968 The distribution and potential taxonomic value of alkylated ellagic acids. Phytochemistry 7(10):1803-1813.

23 MAIR AGR, PANDIYAN M, VENKASUBRAMANIAN H, 1987 Polyphenolic compounds from flowers of Psidium guajava. Fitoterapia 58(3):204-205.

24 SESHADRI TR, VASISHTA K, 1965 Polyphenols of the leaves of Psidium guava-quercetin, guaijaverin, leucocyanidin and amritoside. Phytochemistry 4:989-992.

25 GRIFFITHS LA, 1959 On the distribution of gentisic acid in green plants. J Exp Biol 10:437-442.

26 KAKIUCHI N, HATTORI M, NAMBA T, NISHIZAWA M, YAMAGISHI T, OKUDA T, 1985 Inhibitory effect of tannins on reverse transcriptase from RNA tumor virus. J Nat Prod 48(4):614-621.

27 LOZOYA X, MECKES M, ABOU-AAID M, TORTORIELLO J, NOZZOLILLO C, ARNASON J, 1994 Quercetin glycosides in Psidium guajava L. leaves and determination of a spasmolytic principle. Arch Med Res 25(1):11-15.

28 OKUDA T, HATANO T, YAZAKI K, 1984 Guavin B, an ellagitannin of novel type. Chem Pharm Bull 32(9):3787-3788.

29 LUTTERODT GD, 1989 Inhibition of gastrointestinal release of acetylcholine by quercetin as a possible mode of action of Psidium guajava leaf extracts in the treatment of acute diarrhoeal disease. J Ethnopharmacol 25(3):235-247.

30 OKUDA T, YOSHIDA T, HATANO T, YAZAKI K, ASHIDA M, 1982 Tannins and related compounds in Myrtaceae. Ellagitannins of the Casuarinaceae, Stachyuraceae and Myrtaceae. Phytochemistry 21:2871-2874.

31 OKUDA T, YOSHIDA T, HATANO T, YAZAKI K, IKEGAMI Y, SHINGU T, 1987 Guavins A, C and D, complex tannins from Psidium guajava. Chem Pharm Bull 35(1):443-446.

32 OSMAN AM, YOUNES ME, SHETA AE, 1974 Triterpenoids of the leaves ofPsidium guajava. Phytochemistry 13:2015-2016.

33 OSMAN A, EL-GARBY Y, SHETA A, 1975 Chemical examination of local plants part. VII. Psidium guajava leaf extracts. Egypt J Chem 18:347.

34 SESHADRI TR, VASISHTA K, 1965 Polyphenols of the stem bark of Psidium guajava, the constitution of a new ellagic acid glycoside (amritoside). Phytochemistry 4:317-326

35 TANAKA T, ISHIDA N, ISHIMATSU M, NONAKA G, NISHIOKA I, 1992 Tannins and related compounds. CXVI. Six new complex tannins, guajavins, psidinins and psiguavin from the bark of Psidium guajava L. Chem Pharm Bull 40(8):2092-2098.

36 MISHRA C, MISRA K, 1981 Chemical constituents of Psidium guajava heartwood. J Indian Chem Soc 58:201-202.

37 SASAKI S, CHIANG HC, HABAGUCHI K, YAMADA T, NAKANISHI K, MATSUEDA S, HSU H, WU W, 1966 The constituents of medicinal plants in Taiwan. Yakugaku Zasshi 86(9):869-870.

38 TRIVEDI KK, MISRA K, 1984 Chemical investigation of Psidium guajava roots. Curr Sci 53(14):746-747.

39 DUKE JA, ATCHLEY AA, 1986 Handbook of proximate analysis tables of higher plants. Boca Raton, USA: CRC Press. p136.

40 ECHEMENDIA C, MORON F, 1997 Efecto antidiarreico de la tintura al 20% de hojas de Psidium guajava (guayaba), en pacientes con diarrea aguda simple en atención primaria de salud. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba.

41 ECHEMENDIA C, 1997 Efecto antidiarreico de la tintura al 20% de hojas de Psidium guajava (guayaba), en pacientes con diarrea aguda simple en atención primaria de salud (Tesis de Maestría). Universidad Médica de La Habana, La Habana, Cuba.

42 GUPTA M, ESPOSITO AVELLA M, 1988 Evaluación química y farmacológica de algunas plantas medicinales de TRAMIL. Centro de Investigaciones Farmacognósticas de la Flora Panameña CIFLORPAN, Facultad de Farmacia, Universidad de Panamá, Panamá, Panamá.

43 MARTINEZ MJ, BETANCOURT J, LOPEZ M, MOREJON Z, BOUCOURT E, MORON F, 2000 Actividad antimicrobiana in vitro de hoja de Psidium guajava L. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba.

44 MORON F, MARTINEZ MC, MORON D, 1999 Disminución del tránsito intestinal en ratones por tintura de guayaba (Psidium guajava L.) oral. Rev Cubana Planta Med 4(2):54-56.

45 MISA C, HERNANDEZ N, ABRAHAM A, 1979 Contribution to the biological evaluation of Cuban plants. I. Rev Cubana Med Trop 31:5-12.

46 CACERES A, JAUREGUI E, HERRERA D, LOGEMANN H, 1991 Plants used in Guatemala for the treatment of dermatomucosal infections. 1: Screening of 38 plant extracts for anticandidal activity. J Ethnopharmacol 33(3):277-283.

47 GNAN SO, DEMELLO MT, 1999 Inhibition of Staphylococcus aureus by aqueous goiaba extracts. J Ethnopharmacology 68(1-3):103-108.

48 CACERES A, TORRES MF, ORTIZ S, CANO F, JAUREGUI E, 1993 Plants used in Guatemala for the treatment of gastrointestinal disorders. IV. Vibriocidal activity of five American plants used to treat infections. J Ethnopharmacol 39(1):73-75.

49 LOZOYA X, BECERRIL G, MARTINEZ M, 1990 Intraluminal perfusion model of in vitro guinea pig ileum as a model of study of the antidiarrheic properties of guava (Psidium guajava). Arch Invest Med (Mex) 21:155-162.

50 CHENG JT, YANG RS, 1983 Hypoglycemic effect of Guava juice in mice and human subjects. Am J Chin Med 11(1-4):74-76.

51 LUTTERODT G, 1992 Inhibition of microlax-induced experimental diarrhea with narcotic-like extracts of Psidium guajava leaf in rats. J Ethnopharmacol 37(2):151-157.

52 LOZOYA X, REYES-MORALES H, CHAVEZ-SOTO MA, MARTINEZ-GARCIA MC, SOTO-GONZALEZ Y, DOUBOVA SV, 2002 Intestinal anti-spasmodic effect of a phytodrug of Psidium guajava folia in the treatment of acute diarrheic disease. J Ethnopharmacol 83:19-24.

53 MARTINEZ MJ, BETANCOURT J, LOPEZ M, MOREJON Z, BOUCOURT E, MORON F, 2000 Actividad genotóxica in vitro de hoja de Psidium guajava L. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba.

54 BETANCOURT J, RAMOS A, VIZOSO A, MARTÍNEZ MJ, LOPEZ M, 2000 Ausencia de actividad genotóxica del extracto fluido de Psidium guajava L (guayaba) evaluada en un sistema de ensayo de Aspergillus nidulans. Rev Cubana Planta Med 5(2):38-40.

55 MARTINEZ MJ, BETANCOURT J, LOPEZ M, MOREJON Z, BOUCOURT E, MORON F, 2000 Actividad genotóxica in vivo de hoja de Psidium guajava L. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba.

56 MARTINEZ MJ, BETANCOURT J, LOPEZ M, MOREJON Z, BARCELO H, LAINEZ A, MONTES ME, REGO R, BOUCOURT E, MORON F, 2000 Toxicidad aguda clásica de hoja de Psidium guajava L. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba.

57 MARTINEZ MJ, BETANCOURT J, LOPEZ M, MOREJON Z, BARCELO H, LAINEZ A, MONTES ME, REGO R, BOUCOURT E, MORON F, 2000 Toxicidad aguda de hoja de Psidium guajava L. en el modelo de clases tóxicas agudas. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba.

58 JAIN AK, SHIMOI K, NAKAMURA Y, TOMITA I, KADA T, 1987 Preliminary study on the desmutagenic and antimutagenic effect of some natural products. Curr Sci 56(24):1266-1269.

59 GIRON L, CACERES A, FREIRE V, ALONZO A, SALVADOR L, 1995 Folleto informativo sobre algunas plantas medicinales comúnmente utilizadas por la población Garífuna de Livingston. Guatemala, Guatemala: Programa TRAMIL-Centroamérica/enda-caribe/CONAPLAMED/FARMAYA/CIID. p26.

60 DELAIGUE J, 2005 TRAMIL survey. PRDI, Tobago House of Assembly, Scarborough, Tobago.

61 PAZOS L, COTO T, GONZALEZ S, 2006 Toxicidad oral aguda dosis repetida, en ratón, del extracto de la corteza fresca de Psidium guajava. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos, LEBi, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

62 MARTINEZ M, HERNANDEZ O, HERNANDEZ J, SARMIENTO E, 2003 Encuesta TRAMIL-GEF Guajiquiro, La Paz. Laboratorio de Histolología Vegetal y Etnobotánica, Dep. de Biología, Universidad Nacional Autónoma de Honduras UNAH, Tegucigalpa, Honduras.

63 MARTINEZ M, MEDINA D, SUANSIN G, SARMIENTO E, 2003 Encuesta TRAMIL-GEF Las Marías, Gracias a Dios. Laboratorio de Histolología Vegetal y Etnobotánica, Dep. de Biología, Universidad Nacional Autónoma de Honduras UNAH, Tegucigalpa, Honduras.

64 HENDERSON C, KRISHNARAYAN V, CASTILLO J, 1996 TRAMIL survey. Belize Enterprise for Sustainable Technology BEST, Belmopan, Belize.

65 Abdelrahim SI, Almagboul AZ, Omer ME, Elegami A, 2002 Antimicrobial activity of Psidium guajava L. Fitoterapia 73(7-8):713-715. 66 Abdelrahim SI, Almagboul AZ, Omer ME, Elegami A, 2002 Antimicrobial activity of Psidium guajava L. Fitoterapia 73(7-8):713-715. 67 Tona L, Kambu K, Ngimbi N, Mesia K, Penge O, Lusakibanza M, Cimanga K, De Bruyne T, Apers S, Totte J, Pieters L, Vlietinck AJ, 2000 Antiamoebic and spasmolytic activities of extracts from some antidiarrhoeal traditional preparations used in Kinshasa, Congo. Phytomedicine 7(1):31-38.

68 PAZOS L, QUIROS S, GONZALEZ S, 2006 Transito intestinal, en ratón, del extracto de la corteza fresca de Psidium guajava. Trabajo TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos, LEBi, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

69 Wei-Wei Zhang, Yan Li, Xue-Qing Wang, Feng Tian, Hong Cao, Min-Wei Wang, Qi-Shi Sun, 2005 Effects of magnolol and honokiol derived from traditional Chinese herbal remedies on gastrointestinal movement. World J Gastroenterol 11(28):4414-4418.

70 PAZOS L, COTO T, GONZALEZ S, 2006 Irritabilidad dérmica, piel sana en conejos, de hoja por decocción de Psidum guajava. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos, LEBi, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

71 BALZ E, BOYER A, BURAUD M, 2007 Enquête TRAMIL à Marie-Galante. U. Bordeaux 3, U. Paris XI Chatenay-Malabry, UAG, Guadeloupe.

72 BOYER A, BURAUD M, 2007 Enquête TRAMIL à La Désirade. U. Paris XI Chatenay-Malabry, UAG, Guadeloupe.

73 MOREJON Z, LOPEZ M, GARCIA MJ, BOUCOURT E, VICTORIA M, FUENTES V, MORON F, BOULOGNE I, ROBINEAU L, 2009 Encuesta TRAMIL preliminar a grupos de vecinos en los municipios 10 de Octubre, Lisa, Marianao, Habana del Este (Cojímar) en la Ciudad de la Habana. Laboratorio Central de Farmacología, Universidad de Ciencias Médicas de La Habana, Ciudad de La Habana, Cuba.

74 LOPEZ M, MOREJON Z, MARTINEZ MJ, BACALLAO Y, FUENTES V, 2009 Toxicidad aguda oral a dosis repetidas de decocción al 50% de hojas frescas de Psidium guajava L. Investigación TRAMIL. Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, Laboratorio Central de Farmacología, C. Habana, Cuba.

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