Petiveria alliacea

nombre científico: 
Petiveria alliacea L.
Familia botánica: 

Distribución geográfica

Originaria de América tropical, cultivada y naturalizada en regiones tropicales.

Descripción botánica

Herbácea o sufruticosa perenne de hasta 1 m de alto, de olor fétido. Hojas alternas, oblongas a elípticas, agudas a acuminadas en el ápice, generalmente glabras. Espigas de hasta 40 cm, pubérulas; flores perfectas, subsésiles, apétalas. Aquenio de alrededor de 8 mm de largo, cuneado, estriado, con seis cerdas terminales reflexas; semilla solitaria, linear.

Voucher(s)

Girón,184,CFEH

Gómez,140961,HUA
FLORPAN,1936,PMA
Jiménez,24,JBSD

flatulencia:

raíz, infusión, vía oral3

dolor de cabeza:

hoja, estrujada, en inhalación2

reumatismo:

hoja y raíz, decocción con sal o azúcar, vía oral6,7

dolor de muela:

  hoja, maceración, en enjuagues bucales2

sinusitis (constipado):

raíz y tallo, en polvo, por inhalación1,6

resfriado:

hoja, decocción, vía oral2

dolor muscular:

hoja, decocción, baño1

enfermedades de la piel:

hoja, decocción, lavado1

gripe:

hoja, decocción, vía oral4

gripe:

raíz, decocción, vía oral5

dolor de cabeza:

raíz, machacada, en inhalación3,6

gripe:

raíz, machacada, inhalación6

asma:

hoja, decocción, vía oral2

Contra afecciones digestivas, asma, fiebre, gripe , resfriado o reumatismo:

preparar una decocción con 30 gramos de hojas picadas en 4 tazas (1 litro) de agua, hervir por 5 minutos en recipiente tapado. Dejar enfriar, colar (filtrar) y beber 2-3 tazas al día39.

Contra flatulencia, gripe o reumatismo:

preparar una decocción o infusión con 30 gramos de raiz picada en 4 tazas (1 litro) de agua. En caso de decocción hervir 10 minutos en recipiente tapado. Para la infusión, agregar el agua hirviendo a los 30 gramos y tapar. Dejar enfriar, colar (filtrar) y beber 2-3 tazas al día39.

Contra enfermedades de la piel:

preparar una decocción con 30 gramos de hoja en 4 tazas de agua (1 litro). Hervir por 5 minutos en recipiente tapado. Dejar enfriar durante 15 a 20 minutos y aplicar en baños o localmente sobre la zona afectada, 2 ó 3 veces al día.

Ninguna preparación debe guardarse por más de 24 horas, ni fuera de refrigeración.

De acuerdo con la información disponible:

El uso de hoja para afecciones digestivas (dolor de estómago, mala digestión o lenta y gases) se clasifica como REC con base en el empleo significativo tradicional documentado en las encuestas TRAMIL, los estudios de toxicidad y de validación.

En caso de que se observe un deterioro del paciente o que el dolor de estómago o la mala digestión persista por más de 3 días debe buscar atención médica.

El uso de la hoja para asma, fiebre, gripe, resfriado y reumatismo se clasifica como REC con base en el empleo significativo tradicional documentado en las encuestas TRAMIL, los estudios de toxicidad y la información científica publicada.

En caso de que se observe un deterioro del paciente o que el asma persista por más de 2 días o la crisis por más de 1 hora, la gripe o el resfriado por más de 7 días debe buscar atención médica.

Por el riesgo del asma para la salud, se recomienda una valoración médica inicial. El uso de este recurso debe ser considerado como complementario al tratamiento médico, salvo contraindicación.

El uso de hoja para enfermedades de la piel, se clasifica como REC con base en el empleo significativo tradicional documentado en las encuestas TRAMIL y la información científica publicada.

Toda aplicación tópica debe seguir estrictas medidas higiénicas para impedir la contaminación o la infección sobreañadida.

En caso de que se observe un deterioro del paciente o que las afecciones de la piel persistan por más de 5 días debe buscar atención médica.

El uso de la raíz para flatulencias, gripe y reumatismo se clasifica como REC con base en el empleo significativo tradicional documentado en las encuestas TRAMIL y la información científica publicada.

No usar durante el embarazo, es suceptible de provocar aborto, la lactancia ni en niños menores de 8 años.

Por los riesgos de la interacción documentada con insulina o hipoglucemiantes orales, se debe evitar la ingesta de decocción de hoja y rama en persona que toma o usa esos medicamentos por una eventual potenciación de sus efectos8.

La raíz y el tallo pueden producir reacciones de hipersensibilidad.

Trabajo TRAMIL28

El extracto acuoso (decocción) liofilizado de hoja fresca, en dosis de 1 y 2 g/kg/día/5 días consecutivos a la semana, vía oral a ratón NGP (5 machos y 5 hembras), durante 70 días, con un período adicional de observación de 14 días, no provocó muertes ni signos de toxicidad evidentes.

Trabajo TRAMIL15

El extracto acuoso (decocción) de hoja (10 g/kg), vía oral a ratón, dosis única y observación por 7 días posteriores, no mostró signos externos de toxicidad.

Trabajos TRAMIL29,30

El extracto acuoso (decocción 30%), rendimiento 9 mg/mL, liofilizado, de hoja jóven fresca, (100, 1,000, 5,000 y 10,000 mg de sólidos totales/kg, dosis única), vía oral a ratón Balb/c (25 hembras y 25 machos en grupos de 10 animales), un grupo control negativo (agua). En observación constante las primeras 24 horas y diaria durante 14 días, no se presentó mortalidad pero disminución de la actividad, piloerección y disminución de la excreción fecal en las primeras horas, el examen macroscópico no evidenció daño de ningún órgano. La decocción no presentó toxicidad29.

En todas condiciones iguales, la vía intraperitoneal provocó disminución de la actividad y piloerección, en la mayor dosis también disnea, exoftalmia, cianosis, opacidad en la córnea y contracción de grupos musculares. La DL50 fue de 1,673 mg/kg30.

Trabajos TRAMIL31-33

El extracto acuoso (decocción 30%), rendimiento 9 mg/mL, liofilizado, de hoja jóven fresca, (200, 400, 600, 800 y 1,000 mg de sólidos totales/kg/día/5 días), vía intraperitoneal a ratón Balb/c, sistema de ensayo de genotoxicidad de morfología de la cabeza del espermatozoide, control negativo (agua destilada) y positivo (ciclofosfamida 20 mg/kg), no mostró efecto genotóxico31.

El mismo extracto, misma vía y controles (200, 418 y 836 mg de sólidos totales/kg/día/2 días), en 6 grupos mixtos de 10 ratones Swiss, no provocó efecto mutagénico, ni efecto tóxico en el modelo de micronúcleos en médula ósea32.

El mismo extracto, in vitro, (1, 10, 100 y 1,000 mg de sólidos totales/mL), sistema de ensayo de genotoxicidad con Aspergillus nidulans D30, no mostró efecto tóxico detectable mediante la reducción de la tasa de crecimiento lineal de las colonias, ni efecto genotóxico33.

El extracto acuoso de hoja seca (1-5 g/kg), vía oral a ratón, no mostró efecto tóxicos en la prueba de toxicidad aguda34.

El extracto acuoso de hoja (100 mg/animal), tallo o raíz (200 mg/animal), vía oral a rata, los días 3ro o 5to después de la inseminación y sacrificados en el día 14vo. Los extractos de raíz y hoja mostraron efecto anti-implantación y el tallo mostró acción cigotóxica. Los controles recibieron agua destilada en volúmenes equivalentes a los extractos y se contaron los cuerpos lúteos, implantes viables y las reabsorciones35.

La DL50 del extracto hidroalcohólico de raíz, por vía oral a rata macho, fue mayor de 1.27 g/kg36.

El extracto hidroalcohólico (70%) de raíz seca, 1 mg (equivalente a 7.7 mg de raíz seca) en aplicación sobre piel de rata, no produjo reacción de irritabilidad durante 15 días sucesivos de aplicación24.

El benzoaldehido presente en raíz y tallo puede causar dermatitis por contacto37,38.

No se dispone de información que documente la toxicidad de su uso medicinal en niños, o durante la lactancia.

 

Trabajo TRAMIL9

Selección fitoquímica preliminar (raíz)

alcaloides:

-

saponósidos:

+

flavonoides:

-

polifenoles:

+

quinonas:

-

taninos:

-

esteroides, terpenoides:

+

 

           

La planta entera contiene cumarinas, alantoína, pinitol, alcohol lignocerílico, ácido lignocérico, lignocerato de lignoceril y triterpenos: acetato de isoarbinol, cinamato de isoarbinol, β-sitosterol y α-friedelinol10,11.

La raíz contiene derivados sulfurados: benzil-hidroxi-etil-trisulfido, tritiolaniacina, dibenzil-trisulfido; derivados benzénicos: benzaldehído, ácido benzoico; nitrato de potasio y β-sitosterol10-12.

La hoja contiene alantoína, nitrato de potasio, alcohol lignocerílico, lignocerato de lignoceril, ácido linoleico, ácido nonadecanoico, ácido oleico, ácido palmítico y ácido esteárico12.

La rama contiene alantoína, N-metil-4-transmetoxiprolina, nitrato de potasio y ácido lignocérico12. El tallo contiene benzil-hidroxi-etil-trisulfido, tritiolaniacina, benzaldehído y ácido benzoico10-12. Las inflorescencias contienen un carbohidrato particular, el pinitol12.

Trabajo TRAMIL13

La decocción al 50% de raíz fresca, in vitro (100 µL/pozo), no mostró actividad contra Staphylococus aureus (ATCC 29737), Bacillus subtilis (ATCC 6633), Escherichia coli (ATCC 10536), Pseudomonas aeruginosa (ATCC 27853), Klebsiella pneumoniae (ATCC 1003), Enterobacter cloacae, Citrobacter koseri, Salmonella sp. ni Candida albicans (ATCC 10231).

Trabajo TRAMIL14

La decocción de hoja liofilizada (100 mg/kg, equivalente a 0.6 g de hoja fresca/kg) por vía oral a ratón, modelo de analgesia por plato caliente y contorsiones inducidas por ácido acético, no indujo efecto analgésico.

Trabajos TRAMIL15

El extracto acuoso (decocción) de hoja (6.25 g/kg), vía oral a rata en modelo de inflamación de edema en pata inducida por carragenina, mostró un efecto antiinflamatorio significativo. Por vía oral (10 g/kg) a ratón, en modelo de contorsiones inducidas por ácido acético vía intraperitoneal, mostró un efecto analgésico significativo. Las dosis se expresan en gramo de planta seca.

Trabajo TRAMIL16

El extracto acuoso (decocción) liofilizado de hoja fresca (100 mg/kg, equivalente a 0.6 g de hoja fresca/kg), vía oral a rata en modelo experimental de pleuresía por carragenina, granuloma por algodón e involución del timo por adrenalectomía, no presentó efecto antiinflamatorio.

Trabajo TRAMIL17

El extracto acuoso (decocción 9 mg/mL) de hoja joven fresca liofilizado (0.1 mg/mL) produjo contracciones significativas del músculo liso en preparaciones de órgano aislado (útero, aorta y fundus gástrico de rata; íleon de curiel y tráquea de conejo). El aumento de las contracciones fue equivalente a las inducidas por potasio (11.4 µg/mL, una concentración similar a la contenida en la dosis de liofilizado aplicada bajo las mismas condiciones experimentales).

La cantidad de ión potasio, determinada por espectrofotometría de absorción atómica, fue de 285 mg/g de liofilizado de la decocción.

Trabajo TRAMIL18

El extracto acuoso (decocción) de hoja fresca liofilizado, en dosis única de 1 y 2 g/kg vía oral a ratón NGP (5 machos y 5 hembras), en modelo de velocidad de tránsito intestinal, no lo modificó de forma estadísticamente significativa.

El extracto fluido de hoja seca con un menstruo hidroalcohólico al 30%, en concentraciones de 0.135; 0.54; 1.075; 4.3 y 17.2 mg/mL, mostró un efecto antigiardiásico significativo, que alcanzó el 96.81% con la mayor concentración y el 5.03% con la menor, sobre el crecimiento in vitro de Giardia lamblia, incubada a 37ºC durante 48 horas y posteriormente ajustada la concentración a 2 x 105 parásitos/0.5 mL. La concentración media inhibitoria (CI50) resultó 2.05 mg/mL19.

El extracto acuoso de partes aéreas no mostró actividad in vitro sobre Pseudomonas aeruginosa y Staphylococcus aureus20, tampoco sobre Trichophyton sp. En concentración de 1 mL/placa fue activo contra Epidermophyton floccosum21.

El extracto acuoso (infusión) y el extracto metanólico de hoja y tallo in vitro inhibieron la replicación del virus de diarrea viral bovina (BVDV), pero no fueron activos frente a virus de Herpes simplex tipo 1, poliovirus tipo 1, adenovirus serotipo 7 y virus de la estomatitis vesicular tipo 122.

El extracto etanólico (60%) de hoja seca in vitro sobre Candida albicans no produjo inhibición23.

El extracto hidroalcohólico (70%) de raíz (1 mg) equivalente a 7.7 mg de raíz seca, aplicado localmente en rata macho, en un modelo experimental de granuloma de algodón y dermatitis por aceite de algodón, evidenció actividad antiinflamatoria local24.

El extracto etanólico 70% de planta entera desecado y diluido posteriormente en etanol 10% (concentración de 0.5 mg/mL), aplicado en dosis de 20 µL, no inhibió (13%) la biosíntesis in vitro de prostaglandina catalizada por ciclooxigenasa-1. En cambio el mismo extracto in vivo, (20 µL/oreja) vía tópica a rata, en el edema inducido por fenilpropiolato de etilo (1 mg/10 µL), tuvo significativa actividad antiinflamatoria25.

El extracto acuoso de raíz cruda, mostró efecto analgésico significativo en las contorsiones inducidas por ácido acético, acetilcolina o solución salina hipertónica en ratón, pero no tuvo efecto en modelos de plato caliente ni de retirada de la cola inmersa en agua caliente. Tampoco causó acción depresora del sistema nervioso central26.

El extracto acuoso (decocción) de planta entera seca (15 g/L ) filtrado, se administró a un grupo de pacientes afectados de osteoartritis (200 mL/persona), se evidenciaron resultados analgésicos que en comparación con los controles no fueron estadísticamente significativos27.

Farmacopea: 

v3

Referencias:  

1 GIRÓN L, 1988
Encuesta TRAMIL (Costa atlántica). Centro Mesoamericano de Tecnología CEMAT, Guatemala, Guatemala.

2 SOLÍS P, CORREA M, GUPTA M, 1995
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3 CHARLES C, 1988
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4 GÓMEZ H, GAITÁN R, DÍAZ F, 2003
Encuesta TRAMIL (Norte del departamento de Bolívar). Grupo de Productos Naturales, Facultad de Ciencias Químicas y Farmacéuticas. Universidad de Cartagena, Cartagena de Indias, Colombia.

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Encuesta TRAMIL (región Este). Dep. de Botánica, Jardín Botánico Nacional, Santo Domingo, Rep. Dominicana.

6 GERMOSÉN-ROBINEAU L, GERÓNIMO M, AMPARO C, 1984
Encuesta TRAMIL. enda-caribe, Santo Domingo, Rep. Dominicana.

7 Castillo D, RodrÍguez S, de los Santos C, BelÉn A, 2003
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La tableta de anamú: un medicamento herbario inmunoestimulante. MEDISAN 8(3), 57-64.

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10 HEGNAUER R, 1973
Chemotaxonomy der Pflanzen. Basel, Schweiz: Birkhauser Verlag. 6:882.

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12 DE SOUSA JR, DEMUNER AJ, PINHEIRO JA, BREITMAIER E, CASSELS BK, 1990
Dibenzyl trisulphide and trans-N-methyl-4-methoxyproline from Petiveria alliacea. Phytochemistry 29(11):3653-3655.

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Evaluación de la actividad antimicrobiana del extracto acuoso de la raíz fresca de Petiveria alliacea L. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, C. Habana, Cuba.

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Ausencia de la acción analgésica de la Petiveria alliacea (anamu) en ratones. Rev Cubana Planta Med 1(1):16-18.

15 DEL CARMEN RIVAS C, JIMENEZ M, AYALA L, CARILLO C, CABRERA Y, 1988
Actividad anti-inflamatoria y analgésica de Petiveria alliaceae. Informe TRAMIL. Centro de Investigación y Desarrollo de Medicamentos (CIDEM), La Habana, Cuba.

16 FURONES JA, MORÓN F, PINEDO Z, 1996
Ausencia de actividad antiinflamatoria del extracto acuoso liofilizado de Petiveria alliacea (anamú) en ratas. Informe TRAMIL. Rev Cubana Planta Med 1(2):34-37.

17 MartÍnez MJ, Betancourt J, LÓpez M, MorejÓn Z, Fuentes V, MORÓN F, PINEDO Z, Boucourt E, 2001
Actividad antimicrobiana y sobre varias preparaciones de músculo liso, in vitro, de la decocción liofilizada de hoja de Petiveria alliacea. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba.

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Velocidad del tránsito intestinal en ratones, del extracto acuoso de hoja fresca de Petiveria alliacea. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos LEBi, Escuela de Medicina, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

19 ECHEVARRIA A, TORRES D, 2001
Efecto de un extracto de Petiveria alliacea Lin sobre el crecimiento de Giardia lamblia in vitro. Rev Cubana Med Mil 30(3):161-165.

20 CÁCERES A, GIRÓN LM, ALVARADO SR, TORRES MF, 1987
Screening of antimicrobial activity of plants popularly used in Guatemala for the treatment of dermatomucosal diseases. J Ethnopharm 20(3):223-237.

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Antiviral activity of Petiveria alliacea against the bovine viral diarrhea virus. Chemotherapy 48(3):144-147.

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Plants used in Guatemala for the treatment of dermatomucosal infections. 1: Screening of 38 plant extracts for anticandidal activity. J Ethnopharm 33(3):277-283.

24 GERMANO DH, CALDEIRA TT, MAZELLA AA, SERTIE JA, BACCHI EM, 1993
Topical anti-inflammatory activity and toxicity of Petiveria alliacea. Fitoterapia 64(5):459-467.

25 ANDERSSON DUNSTAN C, NOREEN Y, SERRANO G, COX PA, PERERA P, BOHLIN L, 1997
Evaluation of some Samoan and Peruvian medicinal plants by prostaglandin biosynthesis and rat ear oedema assays. J Ethnopharmacol 57(1):35-56.

26 LIMA TCM, MORATO GS, TAKAHASHI RN, 1991
Evaluation of antinociceptive effect of Petiveria alliacea (guiné) in animals. Mem Inst Oswaldo Cruz 86(suppl.2):153-158.

27 FERRAZ MB, PEREIRA RB, IWATA NM, ATRA E, 1991
Tipi. A popular analgesic tea. A double blind cross-over trial in osteoarthritis. Clin Exp Rheumatol 9(2):205-206.

28 GarcÍa GM, Coto MT, GonzÁlez CS, Pazos L, 1996
Toxicidad sub-crónica en ratones, del extracto acuoso de hojas frescas de Petiveria alliacea. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos LEBi, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

29 GUERRA MJ, BETANCOURT J, LÓPEZ M, MOREJÓN Z, BOUCOURT E, FUENTES V, MORÓN F, 2001
Toxicidad aguda (DL50) oral de la decocción de hojas jóvenes frescas de Petiveria alliacea L. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología. Facultad de Medicina “Dr. Salvador Allende”. C. La Habana, Cuba.

30 GUERRA MJ, BETANCOURT J, LÓPEZ M, MOREJÓN Z, BOUCOURT E, FUENTES V, 2001
Toxicidad aguda (DL50) intraperitoneal de la decocción liofilizada de hojas frescas de Petiveria alliacea L. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología. Facultad de Medicina “Dr. Salvador Allende”. C. La Habana, Cuba.

31 GUERRA MJ, BETANCOURT J, LÓPEZ M, MOREJÓN Z, BOUCOURT E, FUENTES V, 2001
Genotoxicidad in vivo: ensayo de morfología de la cabeza del espermatozoide en ratones de decocción liofilizada de hojas frescas de Petiveria alliacea L. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología. Facultad de Medicina “Dr. Salvador Allende”, C. La Habana, Cuba.

32 GUERRA MJ, BETANCOURT J, LÓPEZ M, MOREJÓN Z, BOUCOURT E, FUENTES V. 2001
Genotoxicidad in vivo: ensayo de micronúcleos en médula ósea de decocción liofilizada de hoja fresca de Petiveria alliacea L. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología. Facultad de Medicina “Dr. Salvador Allende”, C. La Habana, Cuba.

33 GUERRA MJ, BETANCOURT J, LÓPEZ M, MOREJÓN Z, BOUCOURT E, FUENTES V, 2001
Genotoxicidad in vitro: mediante el sistema de ensayo con Aspergillus nidulans de decocción liofilizada de hoja fresca Petiveria alliacea L. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología. Facultad de Medicina “Dr. Salvador Allende”, C. La Habana, Cuba.

34 CÁCERES A, LÓPEZ B, GONZÁLEZ S, BERGER I, TADA I, MAKI J, 1998
Plants used in Guatemala for the treatment of protozoal infections. I. Screening of activity to bacteria, fungi and American trypanosomes of 13 native plants. J of Ethnopharmacology 62(3):195-202.

35 GUERRA MO, OLIVEIRA AB, MAIA JGS, PETERS VM, 1989
Alteraçäo do desenvolvimento embrionário de ratos após tratamento com extratos aquosos de diferentes orgäos de Petiveria alliacea. Bol Centro Biol Reprod 8:17-22.

36 GERMANO DHP, SERTIE JAA, BACCHI EM, 1995
Pharmacological assay of Petiveria alliacea. II. Oral anti-inflammatory activity and gastrotoxicity of a hydroalcoholic root extract. Fitoterapia 66(3):195-202.

37 REYNOLDS J Ed., 1996
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38 BUDAVARI S Ed., 2001
The Merck Index: an encyclopedia of chemical, drugs, and biologicals. 30th ed. Whitehouse Station, USA: Merck & Co., Inc. p181.

39 ALBORNOZ A, 1993
Medicina tradicional herbaria. Caracas, Venezuela: Editorial Instituto Farmacoterápico Latino S.A. p298.

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