Petiveria alliacea

nombre científico: 
Petiveria alliacea L.
Familia botánica: 

Descripción botánica

Herbácea o sufruticosa perenne de hasta 1 m de alto, de olor fétido. Hojas alternas, oblongas a elípticas, agudas a acuminadas en el ápice, generalmente glabras. Espigas de hasta 40 cm, pubérulas; flores perfectas, subsésiles, apétalas. Aquenio de alrededor de 8 mm de largo, cuneado, estriado, con seis cerdas terminales reflexas; semilla solitaria, linear.

Voucher(s)

Jiménez,24,JBSD

Girón,184,CFEH

Gómez,140961,HUA

FLORPAN,1936,PMA

Ochoa,269,HPMHV

flatulencia:

raíz, infusión, vía oral5

dolor de cabeza:

hoja, estrujada, en inhalación2

reumatismo:

hoja y raíz, decocción con sal o azúcar, vía oral9-10

dolor de muela:

  hoja, maceración, en enjuagues bucales2

sinusitis (constipado):

raíz y tallo, en polvo, por inhalación1,6

rhume:

hoja y tallo, decocción, vía oral8

dolor muscular:

hoja, decocción, baño1

enfermedades de la piel:

hoja, decocción, lavado1

gripe:

hoja, decocción, vía oral7

gripe:

raíz, decocción, vía oral4

dolor de cabeza:

raíz, machacada, en inhalación3,6

gripe:

raíz, machacada, inhalación6

Para afecciones digestivas y resfriado:

Preparar una decocción con 30 gramos (3 cucharadas) de hoja picada en 1 litro de agua (4 tazas). Hervir por un mínimo de 10 minutos en recipiente tapado. Filtrar, enfriar y beber 2-3 tazas al día37.

Para reumatismo:

Preparar una decocción con 30 gramos (3 cucharadas) de hoja y raíz picadas, en 1 litro de agua (4 tazas). Hervir por un mínimo de 10 minutos en recipiente tapado. Filtrar, enfriar y beber 2-3 tazas al día37.

Para constipado (sinusitis):

Preparar un polvo fino de raíz y tallo a partir del material desecado y tamizado, inhalar por cada fosa nasal 0.2 a 0.5 gramos, 2 veces al día38.

Para dolor de cabeza, dolor de muela, dolor muscular, flatulencias, gripe y enfermedades de la piel:

No se dispone de información para establecer una forma de preparación y dosificación más que la referida por el uso tradicional.

Ninguna preparación debe guardarse por más de 24 horas, ni fuera de refrigeración.

De acuerdo con la información disponible:

El uso de hoja para afecciones digestivas (dolor de estómago, mala digestión o lenta y gases), dolor de muela, dolor muscular, enfermedades de la piel, reumatismo y resfriado se clasifica como REC con base en el empleo significativo tradicional documentado en las encuestas TRAMIL y los estudios de toxicidad.

En caso de que se observe un deterioro del paciente o que el dolor de estómago persista por más de 3 días debe buscar atención médica.

El uso para dolor de cabeza, flatulencias, gripe y constipado (sinusitis) se clasifica como REC con base en la experiencia tradicional en el uso (OMS/WHO)11 documentado por su empleo significativo en las encuestas TRAMIL.

Toda aplicación tópica debe seguir estrictas medidas higiénicas para impedir la contaminación o la infección sobreañadida.

Por los riesgos de la interacción documentada con insulina o hipoglucemiantes orales, se debe evitar la ingesta de decocción de hoja y rama en persona que toma o usa esos medicamentos por una eventual potenciación de sus efectos.

La raíz y el tallo pueden producir reacciones de hipersensibilidad.

No usar durante la lactancia ni en niños menores de 12 años.

No usar durante el embarazo porque es susceptible de provocar aborto.

Trabajo TRAMIL31

El extracto acuoso (decocción) de hoja fresca, liofilizado, por vía oral a 10 ratones NGP (5 machos y 5 hembras), en dosis de 1 y 2 g/kg/día, por 5 días consecutivos a la semana, durante 70 días, con un período adicional de observación de 14 días, no provocó muertes ni signos de toxicidad evidentes.

Trabajo TRAMIL17

El extracto acuoso (decocción) de hoja, por vía oral a ratón (10 g/kg), dosis única y observación por 7 días posteriores, no mostró signos externos de toxicidad.

Trabajos TRAMIL32,42

El extracto acuoso (decocción 30%), rendimiento 9 mg/mL, liofilizado, de hoja jóven fresca, vía oral (100, 1000, 5000 y 10000 mg de sólidos totales/kg, dosis única), en ratón Balb/c (25 hembras y 25 machos en grupos de 10 animales), un grupo control negativo (agua). En observación constante las primeras 24 horas y diaria durante 14 días, no se presentó mortalidad pero disminución de la actividad, piloerección y disminución de la excreción fecal en las primeras horas, el examen macroscópicono evidenció daño de ningún órgano. La decocción no presentó toxicidad32.

En todas condiciones iguales, la vía intraperitoneal provocó disminución de la actividad y piloerección, en la mayor dosis también disnea, exoftalmia, cianosis, opacidad en la córnea y contracción de grupos musculares. La DL50 fue de 1673 mg/kg42.

Trabajos TRAMIL39-41

El extracto acuoso (decocción 30%), rendimiento 9 mg/mL, liofilizado, de hoja jóven fresca,vía intraperitoneal (200, 400, 600, 800 y 1000 mg de sólidos totales/kg/día/5 días), en ratón Balb/c, sistema de ensayo de genotoxicidad de morfología de la cabeza del espermatozoide, control negativo (agua destilada) y positivo (ciclofosfamida 20 mg/kg), no mostró efecto genotóxico39.

El mismo extracto, misma vía y controles (200, 418 y 836 mg de sólidos totales/kg/día/2 días), en 6 grupos mixtos de 10 ratones Swiss, no provocó efecto mutagénico, ni efecto tóxico en el modelo de micronúcleos en médula ósea40.

El mismo extracto,in vitro, (1, 10, 100 y 1000 mg de sólidos totales/mL), sistema de ensayo de genotoxicidad con Aspergillus nidulans D30, no mostró efecto tóxico detectable mediante la reducción de la tasa de crecimiento lineal de las colonias, ni efecto genotóxico41.

El extracto acuoso de hoja seca, administrado por vía oral (1-5 g/kg), a ratones (el original no dice cuantos), no mostró efecto tóxicos en la prueba de toxicidad aguda43.

El extracto acuoso de hoja (100 mg/animal), tallo o raíz (200 mg/animal), por vía oral a ratas, los días 3ro o 5to después de la inseminación y sacrificados en el día 14vo. Los extractos de raíz y hoja mostraron efecto anti-implantación y el tallo mostró acción cigotóxica. Los controles recibieron agua destilada en volúmenes equivalentes a los extractos y se contaron los cuerpos lúteos, implantes viables y las reabsorciones33.

La DL50 del extracto hidroalcohólico de raíz, por vía oral a rata macho fue mayor de 1.27 g/kg34.

El extracto hidroalcohólico (70%) de raíz seca, 1 mg (equivalente a 7.7 mg de raíz seca) en aplicación sobre piel de rata, no produjo reacción de irritabilidad durante 15 días sucesivos de aplicación28.

El benzoaldehido presente en raíz y tallo puede causar dermatitis por contacto35-36.

No se dispone de información que documente la toxicidad de su uso medicinal en niños, o durante la lactancia.

Trabajo TRAMIL12

Selección fitoquímica preliminar (raíz)

alcaloides:

-

saponósidos:

+

 

flavonoides:

-

polifenoles:

+

 

quinonas:

-

taninos:

-

 

esteroides, terpenoides:

+

 

 

               

La planta entera contiene cumarinas, alantoína, pinitol, alcohol lignocerílico, ácido lignocérico, lignocerato de lignoceril y triterpenos : acetato de isoarbinol, cinamato de isoarbinol, ß-sitosterol y α-friedelinol13-14.

La raíz contiene derivados sulfurados: benzil-hidroxi-etil-trisulfido, tritiolaniacina, dibenzil-trisulfido; derivados benzénicos: benzaldehído, ácido benzoico; nitrato de potasio y ß-sitosterol13-15.

La hoja contiene alantoína, nitrato de potasio, alcohol lignocerílico, lignocerato de lignoceril, ácido linoleico, ácido nonadecanoico, ácido oleico, ácido palmítico y ácido esteárico15.

La rama contiene alantoína, N-metil-4-transmetoxiprolina, nitrato de potasio y ácido lignocérico15. El tallo contiene benzil-hidroxi-etil-trisulfido, tritiolaniacina, benzaldehído y ácido benzoico13-15. Las inflorescencias contienen un carbohidrato particular, el pinitol15.

Trabajo TRAMIL16

La decocción de hoja liofilizada por vía oral a ratón (100 mg/kg, equivalente a 0.6 g de hoja fresca/kg) en modelo de analgesia por plato caliente y contorsiones inducidas por ácido acético, no indujo efecto analgésico.

Trabajos TRAMIL17

El extracto acuoso (decocción) de hoja, por vía oral a rata (6.25 g/kg), en modelo de inflamación de edema en pata de rata inducida por carragenina, mostró un efecto antiinflamatorio significativo. Por vía oral a ratón (10 g/kg) en modelo de contorsiones inducidas por ácido acético vía intraperitoneal, mostró un efecto analgésico significativo. Las dosis se expresan en gramo de planta seca.

Trabajo TRAMIL18

El extracto acuoso liofilizado de hoja fresca, por vía oral a rata (100 mg/kg, equivalente a 0.6 g de hoja fresca/kg) en modelo experimental de pleuresía por carragenina, granuloma por algodón e involución del timo por adrenalectomía, no presentó efecto antiinflamatorio.

Trabajo TRAMIL19

El extracto acuoso (decocción 9 mg/mL)de hoja joven fresca liofilizada (0.1 a 1000 mg/mL), in vitro, sobre Staphylococcus aureus, Bacillus subtilis, Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa y Candida albicans y los hongos Aspergillus nidulans y Trichophyton mentagrophytesno presentó actividad antimicrobiana. El liofilizado (0.1 mg/mL) produjo contracciones significativas del músculo liso en preparaciones de órgano aislado (útero, aorta y fundus gástrico de rata; íleon de curiel y tráquea de conejo). El aumento de las contracciones fue equivalente a las inducidas por potasio (11.4 µg/mL, una concentración similar a la contenida en la dosis de liofilizado aplicada bajo las mismas condiciones experimentales).

La cantidad de ión potasio, determinada por espectrofotometría de absorción atómica, fue de 285 mg/g de liofilizado de la decocción.

Trabajo TRAMIL20

El extracto acuoso (decocción) de hoja fresca liofilizado, vía oral a 10 ratones NGP (5 machos y 5 hembras) en dosis única de 1 y 2 g/kg, en modelo de velocidad de tránsito intestinal, no lo modificó de forma estadísticamente significativa.

El extracto fluido de hoja seca con un menstruo hidroalcohólico al 30%, en concentraciones de 0.135; 0.54; 1.075; 4.3 y 17.2 mg/mL, mostró un efecto antigiardiásico significativo, que alcanzó el 96.81% con la mayor concentración y el 5.03% con la menor, sobre el crecimiento in vitro de Giardia lamblia, incubada a 37ºC durante 48 horas y posteriormente ajustada la concentración a 2 x 105 parásitos/0.5 mL. La concentración media inhibitoria (CI50) resultó 2.05 mg/mL21.

El extracto acuoso de partes aéreasin vitro sobre Pseudomonas aeruginosa yStaphylococcus aureus no mostró actividad22, tampoco sobre Trichophyton sp. En concentración de 1 mL/placa fue activo sobre Epidermophyton floccosum23.

El extracto hidroalcohólico (70%) de partes aéreasin vitro (100 mg/mL) sobre Plasmodium falciparum, fue inactivo24. El extracto acuoso (infusión) y el extracto metanólico de hoja y tallo in vitro (placa de ensayo) inhibieron la replicación del virus de diarrea viral bovina (BVDV), pero no fueron activos frente a virus de Herpes simplex tipo 1, poliovirus tipo 1, adenovirus serotipo 7 y virus de la estomatitis vesicular tipo 125.

El extracto etanólico (60%) de hoja seca in vitro sobreCandida albicans no produjo inhibición26.

Los extractos hidroalcohólicos de hoja y rama secas por vía oral a ratón (1 g/animal), disminuyeron un 60% los niveles de glucosa sanguínea, en las mismas condiciones, la raíz seca fue inactiva27.

El extracto hidroalcohólico (70%) de raíz (1 mg) equivalente a 7.7 mg de raíz seca, aplicado localmente en rata macho, en un modelo experimental de granuloma de algodón y dermatitis por aceite de algodón, evidenció actividad antiinflamatoria local28.

El extracto acuoso (decocción) de planta entera seca (15 g/L ) filtrado, se administró a un grupo de pacientes afectados de osteoartritis (200 mL/persona), se evidenciaron resultados analgésicos que en comparación con los controles no fueron estadísticamente significativos29.

El extracto acuoso de raíz cruda, mostró efecto analgésico significativo en las contorsiones inducidas por ácido acético, acetilcolina o solución salina hipertónica en ratón, pero no tuvo efecto en modelos de plato caliente ni de retirada de la cola inmersa en agua caliente. Tampoco causó acción depresora del sistema nervioso central30.

Referencias:  

1 GIRON L, 1988 Encuesta TRAMIL (Costa atlántica). Centro Mesoamericano de Tecnología CEMAT, Guatemala, Guatemala.

2 WENIGER B, ROUZIER M, 1986 Enquête TRAMIL. Service Oecuménique d'Entraide SOE, Port au Prince, Haïti.

3 WENIGER B, 1987-88 Encuesta TRAMIL. enda-caribe, Santo Domingo, Rep. Dominicana.

4 Castillo D, Rodriguez S, de los Santos C, Belen A, 2003 Encuesta TRAMIL (región Este). Dep. de Botánica, Jardín Botánico Nacional, Santo Domingo, Rep. Dominicana.

5 CHARLES C, 1988 TRAMIL survey. Movement for Cultural Awareness MCA, Roseau, Dominica.

6 LAGOS-WITTE S, Tinoco R, Merlo V, 1996 Encuesta complementaria TRAMIL. Laboratorio de Histología Vegetal y Etnobotánica, Dep. de Biología, Universidad Nacional Autónoma de Honduras UNAH, Tegucigalpa, Honduras.

7 GOMEZ H, GAITAN R, DIAZ F, 2003 Encuesta TRAMIL (Norte del departamento de Bolívar). Grupo de Productos Naturales, Facultad de Ciencias Químicas y Farmacéuticas. Universidad de Cartagena, Cartagena de Indias, Colombia.

8 SOLIS P, CORREA M, GUPTA M, 1995 Encuesta TRAMIL (Comunidades afro-caribeñas). Centro de Investigaciones Farmacognósticas de la Flora Panameña CIFLORPAN, Facultad de Farmacia, Universidad de Panamá, Panamá, Panamá.

9 GERMOSEN-ROBINEAU L, GERONIMO M, AMPARO C, 1984 Encuesta TRAMIL. enda-caribe, Santo Domingo, Rep. Dominicana.

10 Castillo D, Rodriguez S, de los Santos C, Belen A, 2003 Encuesta TRAMIL (Zambrana, Cotuí). Dep. de Botánica, Jardin Botánico Nacional, Santo Domingo, Rep. Dominicana.

11 WHO, 1991 Pautas para la evaluación de medicamentos herbarios WHO/TRM/91.4 (original inglés). Programa de Medicina Tradicional, OMS, Ginebra, Suiza.

12 WENIGER B, SAVARY H, DAGUIHL R, 1984 Tri phytochimique de plantes de la liste TRAMIL. Laboratoire de chimie des substances naturelles, Faculté de Médecine et de Pharmacie, Université d'Etat d'Haïti, Port au Prince, Haïti.

13 HEGNAUER R, 1973 Chemotaxonomy der Pflanzen. Basel, Schweiz: Birkhauser Verlag. 6:882.

14 SEGELMAN F, SEGELMAN A, 1975 Constituents of Petiveria alliacea. Lloydia 38(6):537.

15 DE SOUSA JR, DEMUNER AJ, PINHEIRO JA, BREITMAIER E, CASSELS BK, 1990 Dibenzyl trisulphide and trans-N-methyl-4-methoxyproline fromPetiveria alliacea. Phytochemistry 29(11):3653-3655.

16 FURONES JA, MORON F, PINEDO Z, 1996 Ausencia de la acción analgésica de la Petiveria alliacea (anamu) en ratones. Rev Cubana Planta Med 1(1):16-18.

17 DEL CARMEN RIVAS C, JIMENEZ M, AYALA L, CARILLO C, CABRERA Y, 1988 Actividad anti-inflamatoria y analgésica dePetiveria alliaceae. Informe TRAMIL. Centro de Investigación y Desarrollo de Medicamentos (CIDEM), La Habana, Cuba.

18 FURONES JA, MORON F, PINEDO Z, 1996 Ausencia de actividad antiinflamatoria del extracto acuoso liofilizado de Petiveria alliacea (anamú) en ratas. Informe TRAMIL. Rev Cubana Planta Med 1(2):34-37.

19 Martinez MJ, Betancourt J, Lopez M, MorejOn Z, Fuentes V, MORON F, PINEDO Z, Boucourt E, 2001 Actividad antimicrobiana y sobre varias preparaciones de músculo liso, in vitro, de la decocción liofilizada de hoja de Petiveria alliacea.Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba.

20 GarcIa GM, Coto MT, GonzAlez CS, Pazos L, 1995 Velocidad del tránsito intestinal en ratones, del extracto acuoso de hoja fresca de Petiveria alliacea. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos LEBI, Escuela de Medicina, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

21 ECHEVARRIA A, TORRES D, 2001 Efecto de un extracto de Petiveria alliacea Lin sobre el crecimiento de Giardia lamblia in vitro. Rev Cubana Med Mil 30(3):161-165.

22 CACERES A, GIRON LM, ALVARADO SR, TORRES MF, 1987 Screening of antimicrobial activity of plants popularly used in Guatemala for the treatment of dermatomucosal diseases. J Ethnopharm20(3):223-237.

23 CACERES A, LOPEZ BR, GIRON MA, LOGEMANN H, 1991 Plants used in Guatemala for the treatment of dermatophytic infections. 1. Screening for the antimicotic activity of 44 plant extracts. J Ethnopharm 31(3):263-276.

24 SAUVAIN M, 1989 Etude de plantes antiparasitaires du plateau des Guyanes en Amazonie: antipaludiques et antileishmaniens (Thèse de Doctorat). Université Paris-Sud, Paris, France.

25 RUFFA MJ, PERUSINA M, ALFONSO V, WAGNER ML, SURIANO M, VICENTE C, CAMPOS R, CAVALLARO L, 2002 Antiviral activity of Petiveria alliacea against the bovine viral diarrhea virus. Chemotherapy 48(3):144-147.

26 CACERES A, JAUREGUI E, HERRERA D, LOGEMANN H, 1991 Plants used in Guatemala for the treatment of dermatomucosal infections. 1: Screening of 38 plant extracts for anticandidal activity. J Ethnopharm 33(3):277-283.

27 LORES RI, PUJOL MC, 1990 Petiveria alliacea L. (anamu). Study of the hypoglycemic effect. Med Interne 28(4):347-352.

28 GERMANO DH, CALDEIRA TT, MAZELLA AA, SERTIE JA, BACCHI EM, 1993 Topical anti-inflammatory activity and toxicity of Petiveria alliacea. Fitoterapia 64(5):459-467.

29 FERRAZ MB, PEREIRA RB, IWATA NM, ATRA E, 1991 Tipi. A popular analgesic tea. A double blind cross-over trial in osteoarthritis. Clin Exp Rheumatol 9(2):205-206.

30 LIMA TCM, MORATO GS, TAKAHASHI RN, 1991 Evaluation of antinociceptive effect of Petiveria alliacea (guiné) in animals. Mem Inst Oswaldo Cruz 86(suppl.2):153-158.

31 GarcIa GM, Coto MT, GonzAlez CS, Pazos L, 1996 Toxicidad sub-crónica en ratones, del extracto acuoso de hojas frescas de Petiveria alliacea. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos LEBI, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

32 GUERRA MJ, BETANCOURT J, LOPEZ M, MOREJON Z, BOUCOURT E, FUENTES V, MORON F, 2001 Toxicidad aguda (DL50) oral de la decocción de hojas jóvenes frescas de Petiveria alliaceaL.Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología. Facultad de Medicina Dr. Salvador Allende. Ciudad de La Habana, Cuba.

33 GUERRA MO, OLIVEIRA AB, MAIA JGS, PETERS VM, 1989 Alteraçäo do desenvolvimento embrionário de ratos após tratamento com extratos aquosos de diferentes orgäos de Petiveria alliacea. Bol Centro Biol Reprod 8:17-22.

34 GERMANO DHP, SERTIE JAA, BACCHI EM, 1995 Pharmacological assay of Petiveria alliacea. II. Oral anti-inflammatory activity and gastrotoxicity of a hydroalcoholic root extract. Fitoterapia 66(3):195-202.

35 REYNOLDS J Ed., 1996 Martindale: The extra pharmacopoeia. Evaluated information on the world’s drugs and medicines. 31st ed. London, England: The Royal Pharmaceutical Society. p1678.

36 BUDAVARI S Ed., 2001 The Merck Index: an encyclopedia of chemical, drugs, and biologicals. 30th ed. Whitehouse Station, USA: Merck & Co., Inc. p181.

37 ALBORNOZ A, 1993 Medicina tradicional herbaria. Caracas, Venezuela: Editorial Instituto Farmacoterápico Latino S.A. p298.

38 CARBALLO A, 1995 Cálculo de concentración y dosis de las drogas vegetales TRAMIL: Mensuraciones farmacognósticas y aproximaciones técnico-clínicas. Laboratorio provincial de producción de medicamentos, Sancti Spiritus, Cuba.

39 GUERRA MJ, BETANCOURT J, LOPEZ M, MOREJON Z, BOUCOURT E, FUENTES V, 2001 Genotoxicidad in vivo: ensayo de morfología de la cabeza del espermatozoide en ratones de decocción liofilizada de hojas frescas de Petiveria alliacea L.Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología. Facultad de Medicina Dr. Salvador Allende, Ciudad de La Habana, Cuba.

40 GUERRA MJ, BETANCOURT J, LOPEZ M, MOREJON Z, BOUCOURT E, FUENTES V. 2001 Genotoxicidad in vivo: ensayo de micronúcleos en médula ósea de decocción liofilizada de hoja fresca de Petiveria alliacea L. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología. Facultad de Medicina Dr. Salvador Allende, Ciudad de La Habana, Cuba.

41 GUERRA MJ, BETANCOURT J, LOPEZ M, MOREJON Z, BOUCOURT E, FUENTES V, 2001 Genotoxicidad in vitro: mediante el sistema de ensayo con Aspergillus nidulans de decocción liofilizada de hoja fresca Petiveria alliacea L. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología. Facultad de Medicina Dr. Salvador Allende, Ciudad de La Habana, Cuba.

42 GUERRA MJ, BETANCOURT J, LOPEZ M, MOREJON Z, BOUCOURT E, FUENTES V, 2001 Toxicidad aguda (DL50) intraperitoneal de la decocción liofilizada de hojas frescas de Petiveria alliaceaL.Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología. Facultad de Medicina Dr. Salvador Allende. Ciudad de La Habana, Cuba.

43 CACERES A, LOPEZ B, GONZALEZ S, BERGER I, TADA I, MAKI J, 1998 Plants used in Guatemala for the treatment of protozoal infections. I. Screening of activity to bacteria, fungi and American trypanosomes of 13 native plants. J of Ethnopharmacology 62(3):195-202.

FORMAL DESCARGO

La información presentada es para fines educativos para el público general y los profesionales de la salud. No pretende reemplazar ninguna regulación o disposición legal. Debido a que algunas partes de plantas pueden eventualmente presentar toxicidad, inducir efectos adversos o interacciones con medicamentos, cualquiera que desee usar este recurso o sus productos derivados debería consultar al médico u otro profesional de la salud calificado. TRAMIL no se hace responsable del uso para una decisión, acción u omisión que se haga a partir de la información contenida en esta Farmacopea.