Allium sativum

nombre científico: 
Allium sativum L.
Familia botánica: 

Descripción botánica

Planta herbácea con bulbos divididos y envueltos en una piel blancuzca. Hojas aplanadas, de 2-3 cm de ancho. Inflorescencia en escapo de unos 50 cm; umbela densa; flores rosadas con ovario oblongo-ovoideo.

Voucher(s)

Faujour,14,BAR

Fuentes,4635,ROIG

Girón,254,CFEH

Jiménez,1519,JBSD

Longuefosse&Nossin,104,HAVPM

dolor de oído:

bulbo machacado, cataplasma, en aplicación local3

candidiasis:

bulbo machacado, baño y fricción1

infección de la piel:

bulbo machacado, baño y fricción1

prurito:

bulbo machacado, baño y fricción1

náusea:

piel seca bulbo, decocción, vía oral74,75

fiebre:

bulbo, decocción, vía oral3

flatulencia:

piel seca bulbo, decocción, vía oral74,75

dolor de muela:

bulbo, en aplicación local1-2

mala sangre:

bulbo, machacado, aplicación en la frente2

hipertensión:

bulbo, decocción, vía oral2-4

parásitos intestinales:

bulbo, decocción, vía oral4,74

El bulbo de Allium sativum constituye un condimento de consumo humano relativamente extendido.

El bulbo de ajo con fines medicinales debería consumirse junto a las comidas para prevenir problemas grastrointestinales71.

Para fiebre, pesadez gástrica, náusea, flatulencias y parásitos intestinales:

Preparar una decocción con 2-5 gramos de ajo fresco71 (1-2.5 dientes) ó 0.4-1.2 gramos de ajo en polvo seco71 en 250 mL (1 taza) de agua, hervir por un mínimo de 10 minutos en recipiente tapado. Enfriar y beber 1 taza 3 veces al día.

Para otras formas de administración del bulbo de ajo, las dosis diarias de consumo recomendadas por la OMS71 son: para aceite de 2 a 5 mg; en forma de extractos de 300 a 1000 mg (como material sólido). Otro tipo de preparaciones farmaceúticas deberían corresponder con valoraciones de aliína de 4-12 mg o 2-5 mg de alicina71.

 

Para afecciones cutáneas, prurito, candidiasis, dolor de muela y dolor de oído:

Pelar y lavar adecuadamente 2-5 gramos (1-2.5 dientes) de ajo fresco, machacarlos y aplicar sobre la zona afectada 2 veces al día.

El uso contra mala sangre constituye parte integral del acervo cultural de nuestras comunidades y no se clasifica en las categorías definidas por TRAMIL.

De acuerdo con la información disponible:

El uso para afecciones cutáneas, prurito, candidiasis, pesadez gástrica, náusea, flatulencias y parásitos intestinales se clasifica como REC con base en el empleo significativo tradicional documentado en las encuestas TRAMIL y la información científica publicada.

El uso para dolor de muela, dolor de oído y fiebre se clasifica como REC con base en la experiencia tradicional en el uso (OMS/WHO)7 documentado por su empleo significativo en las encuestas TRAMIL.

El bulbo de ajo puede producir reacciones de hipersensibilidad. Toda aplicación tópica debe seguir estrictas medidas higiénicas para impedir la contaminación o infección sobreañadida.

Por el riesgo de que el dolor de oído obedezca a una otitis media o interna, se recomienda en primera instancia la valoración médica. Se contraindica su utilización en presencia de secreciones a través del oído y/o eventual perforación del tímpano. En caso de que se observe un deterioro del paciente o que el dolor de oído persista por más de 2 días, debe buscar atención médica.

Se contraindica su uso en hipertiroidismo8. Los extractos de ajo interactúan con el tratamiento anticoagulante, antihipertensivo y antidiabético.

Trabajo TRAMIL72

El bulbo fresco pelado y machacado, por vía tópica (parche con 6 mL/6 cm2 de piel/4 horas), modelo de irritabilidad dérmica aguda de Draize, a conejos albinos Nueva Zelanda (3 machos), se retiró el parche a las 4 horas y se lavó el área, se hicieron las lecturas de eritema y edema a 1, 24, 48 y 72 horas, mostró un índice de 0.55 que clasifica como ligeramente irritante.

Trabajo TRAMIL73

La decocción de bulbo fresco machacado sin pelar al 30% (rendimiento: 4,46 mg/mL), vía oral (volumen máximo de 2 mL/100 g de peso corporal; equivalente a 6 g de material vegetal/kg y a 928 mg/kg del contenido de sólidos totales extraídos), en rata, en el modelo de clases tóxicas agudas, no provocó muerte ni signos evidentes de toxicidad en las primeras 24 horas ni durante los 14 días de observación, ni evidenció cambios en los estudios histopatológicos.

La DL50 de bulbo por vía oral y subcutánea a rata de ambos sexos fue superior a 30 mL/kg62.

El extracto acuoso de bulbo provocó actividad uterotónica in vitro sobre útero de ratón hembra gestante46.

El extracto de bulbo (2 g/kg) administrado en rata 5 veces por semana por 6 meses no evidenció efectos tóxicos63.

El extracto acuoso de bulbo (100 mg/día) por vía oral a rata macho y hembra durante 3 meses, no provocó cambio del peso corporal ni evidenció alteraciones anatomopatológicas en hígado, corazón ni vesículas seminales del macho. El recuento de glóbulos blancos y rojos no se modificó64.

El zumo de bulbo agregado al agua para beber (5%) en la dieta de rata, no provocó ningún efecto tóxico evidente65.

Por vía externa, los cataplasmas con altas concentraciones de extracto de bulbo pueden provocar necrosis de la piel66 y actividad alergénica67. Esto último, también, se ha comprobado con la administración interna del extracto acuoso por vía oral, en rata y humano sensible68.

El bulbo por vía oral puede provocar irritación de vías urinarias, en personas que presentan sensibilidad específica69. En dosis de 350 mg/persona (ambos sexos de 30 a 62 años) administrado 2 veces al día no produjo manifestaciones tóxicas70.

No se dispone de información que documente la seguridad de su uso medicinal en niños, durante el embarazo o la lactancia.

El bulbo ha sido ampliamente estudiado y contiene, entre otros componentes, compuestos sulfurados: ajoeno y derivados9, alicina10, alil-metil trisulfuro y derivados11-12, cicloaliína y derivados13-14, dialil-disulfuro y derivados, dimetil sulfuro15, alil-metil-disulfuro y derivados16, dimetil tiosulfonato y derivados17; aminoácidos sulfurados: aliína (que por oxidación enzimática se transforma en alicina, producto intermedio en la formación de los derivados disulfurados de alilo, constituyentes finales del aceite esencial)13, 5-butil-cisteína-sulfóxido y derivados18; lípidos: cerebrósidos19, prostaglandina A, B, E y F20; alcaloides: fosfatidil colina20, ácido nicotínico21; diterpenos: giberelina A-3 y A-722; carbohidratos: fructanos de allium23-24; saponinas: derivados de erubiósido25, sativósido y tigonina26.

Análisis proximal de 100 g de bulbo27: calorías: 117; agua: 67.8%; proteínas: 3.5%; grasas: 0.3%; carbohidratos: 27.4%; fibras: 0.7%; cenizas: 1%; calcio: 18 mg; fósforo: 88 mg; hierro: 1.5 mg; sodio: 18 mg; potasio: 373 mg; caroteno: 0 µg; tiamina: 0.24 mg; riboflavina: 0.05 mg; niacina: 0.4 mg; ácido ascórbico: 10 mg.

El extracto de bulbo (25 mg/mL) y el extracto alcohólico (0.01%) provocaron inhibiciónin vitro de la agregación plaquetaria inducida por epinefrina, determinada por la mayor producción de óxido nitroso a nivel intracelular; el extracto acuoso al 0.01% mostró un efecto débil28.

Al bulbo se le atribuyó actividad antifúngica,in vitro, particularmente sobre dermatofitos y levaduras patógenas al hombre29, inhibición de la síntesis de macromoléculas de Candida albicans30 y actividad antiviral contra Herpes simplex e Influenza B pero no contra Coxsackie31.

El extracto acuoso de bulbo fue activo in vitro contra Escherichia coli, Pasteurella multocida, Proteus sp y Staphylococcus aureus; e inactivo contra Pseudomonas aeruginosa32.También, inhibióin vitro el crecimiento de Criptococcus neoformans33 y Aspergillus parasiticus34.

El extracto hidroalcohólico (1:1) de bulbo fresco machacado (20 ó 50% peso/volumen), en concentraciones de 50 y 100 µL/pozo, mostró actividad significativa in vitro frente a Candida albicans, Epidermophyton floccosum, Trichophyton metagrophytes, T. rubrumy contra Staphylococcus aureus, Bacillus subtilis, Escherichia coli y Pseudomonas aeruginosa35.

El extracto hidrometanólico (1:1)36 y la tintura etanólica (10%)37 de bulbo seco (30 µL/disco) mostraron actividad contra microorganismos gram + y gram -. Además, la tintura fue activa contra Staphylococcus aureus yPseudomonas aeruginosa37.

Los extractos acuoso y metanólico de bulbo (10 mg/mL) mostraron actividad débil contraToxocara canis38.

El extracto acuoso de bulbo (173 y 204 mL/kg) vía oral en conejo fue activo contra shigelosis experimental, después de tres días de tratamiento39.

El extracto butanólico de bulbo (200 mg/kg) por vía oral a ratón mostró actividad antihelmíntica contra Aspiculurus tetraptera40.

El extracto etanólico (95%) de bulbo (125 mg/kg) por vía oral a ratón, fue activo como antiasténico41.

El extracto acuoso (2 g/kg) por vía oral a rata, en los modelos de granuloma pouch y de formalina, mostró una débil actividad antiinflamatoria42.

El extracto hidroalcóhólico (1:1) de bulbo por vía intraperitoneal a rata, en el modelo de inflamación con carragenina, mostró actividad antiinflamatoria43.

El extracto acuoso de bulbo como parte de la alimentación de rata provocó disminución del colesterol y protegió contra la aterosclerosis experimental44.

El bulbo mostró actividad antihepatotóxica in vivo e in vitro en rata45 y se ha descrito estimulación uterina en el roedor en gestación46.

El zumo de bulbo, aplicado por vía externa a conejo, mostró actividad antifúngica sobre Microsporum canis47, Sporotrichum shenkii48 y sobre los géneros Epidermophyton, Trychosporum, Trichosporon, Rodotorula y Torulopsis49.

En estudios preclínicos, la administración oral de bulbo mostró actividad vasodilatadora coronaria, cronotrópica e inotrópica negativa50-51, diurética52-53, vasodilatadora sistémica, antiagregante plaquetaria e hipocolesterolémica54.

El bulbo por vía oral ha mostrado actividad antihipertensiva, reportada en rata y en humano49-51.

El bulbo (4 g/persona) por vía oral en dosis única estimuló la síntesis de óxido nitroso28.

En un estudio clínico con 20 pacientes, el bulbo crudo aumentó la actividad fibrinolítica en un 72% a las 6 horas y el bulbo cocido la aumentó a 63%55.

En una serie de 29 pacientes con pesadez, flatulencias y náusea, el bulbo (0.64 g/persona) por vía oral 2 veces/día por 2 semanas, mostró efecto carminativo56.

En un estudio clínico con 564 enfermos de cáncer y 1131 personas como control, se reportó una reducción significativa del riesgo del cáncer de estómago por consumo de bulbo57.

En un estudio clínico, el extracto hidroalcohólico (1:1) de bulbo seco machacado (20-50% peso/volumen), en aplicación tópica 2 veces al día durante 4 semanas, en 60 pacientes por grupo(15-60 años) de ambos sexos con diagnóstico micológico (directo y cultivo) de dermatofitos, mostró efecto antimicótico significativo, en comparación al ácido salicílico 3% como control58.

El extracto alcohólico de bulbo por vía oral a conejo mostró actividad hipoglucemiante en el 59% de los animales tratados, en comparación con el grupo que recibió 500 mg de tolbutamida. Con el test de sobrecarga de glucosa en rata, el extracto de bulbo seco disminuyó la hiperglucemia inicial; el polvo de ajo añejado, en rata, aumentó los niveles de insulina en sangre. En un estudio aleatorizado y controlado, el extracto de polvo seco de ajo en pacientes diabéticos no insulinodependientes provocó un descenso del 11.6% de la glucemia contra 0% del grupo con placebo59.

En fitoterapia se utiliza como un agente antiinfeccioso útil en el tratamiento del cólera y la tuberculosis; en términos generales, vermífugo antiséptico, fungicida en dermatosis provocadas por levaduras patógenas, especialmente Candida albicans. También, como hipotensor, vasodilatador arteriolar y capilar (periférico y cerebral), cronotrópico negativo, hipolipidemiante, antiateroesclerótico, fibrinolítico, anticoagulante, vasodilatador coronario, diurético y antiagregante plaquetario; esta última acción es debida al bloqueo de la síntesis del tromboxano A2 mediante la inhibición de la tromboxano-sintetasa; y como antiespasmódico, analgésico, neurotrópico, eupéptico y colerético60.

Al aceite esencial (1 g/kg) por vía oral se le atribuye actividad anticoagulante en conejo61.

Referencias:  

1 WENIGER B, ROUZIER M, 1986 Enquête TRAMIL. Service Oecuménique d'Entraide SOE, Port au Prince, Haïti.

2 GERMOSEN-ROBINEAU L, GERONIMO M, AMPARO C, 1984 Encuesta TRAMIL. enda-caribe, Santo Domingo, Rep. Dominicana.

3 GIRON L, 1988 Encuesta TRAMIL (Costa atlántica). Centro Mesoamericano de Tecnología CEMAT, Guatemala, Guatemala.

4 WENIGER B, 1987-88 Encuesta TRAMIL. enda-caribe, Santo Domingo, Rep. Dominicana.

5 JEAN-PIERRE L, 1988 TRAMIL survey. St Lucia national herbarium, Castries, St Lucia.

6 FAUJOUR A, MURREY D, CHELTENHAM-CORBIN B, CARRINGTON S, 2003 TRAMIL survey. enda-caribbean, IICA & UAG, Saint Thomas, Barbados.

7 WHO, 1991 Pautas para la evaluación de medicamentos herbarios WHO/TRM/91.4 (original inglés). Programa de Medicina Tradicional, OMS, Ginebra, Suiza.

8 ARTECHI A (Ed.), 1998 Fitoterapia Vademécum de prescripción Plantas Medicinales. Barcelona, España: Masson. p63.

9 SENDL A, ELBL G, STEINKE B, REDL K, BREU W, WAGNER H, 1992 Comparative pharmacological investigations of Allium ursinum and Allium sativum. Planta Med 58:11-17.

10 CALVEY EM, ROACH JAG, BLOCK E, 1994 Supercritical fluid chromatography of garlic (Allium sativum) extracts with mass spectrometric identification of allicin. J Chromatogr Sci 32:393-396.

11 BLOCK E, AHMAD S, CATALFAMO JL, JAIN MK, APITZ-CASTRO R, 1986 Antithrombotic organosulfur compounds from garlic: structural, mechanistic, and synthetic studies. J Amer Chem Soc 108:227045-227055.

12 MOCHIZUKI E, YAMAMOTO T, KOMIYAMA Y, NAKAZAWA H, 1998 Identification of Allium products using flame photometric detection gas chromatography and distribution patterns of volatile sulfur compounds. J Agr Food Chem 46:125170-125176.

13 UEDA Y, SAKAGUCHI M, HIRAYAMA K, MIYAJIMA R, KIMIZUKA A, 1990 Characteristic flavor constituents in water extract of garlic. Agr Biol Chem 54:1163-1169.

14 KOCH HP, JAGER W, 1989 Garlic allicin release from fresh and dried garlic and products thereof. Dtsch Apoth Ztg 129:6273-6276.

15 LAWSON LD, WANG ZYJ, HUGHES BG, 1991 Identification and hplc quantitation of the sulfides and dialk(en)yl thiosulfinates in commercial garlic products. Planta Med 57:363-370.

16 OHSUMI C, HAYASHI T, KUBOTA K, KOBAYASHI A, 1993 Volatile flavor compounds formed in an interspecific hybrid between onion and garlic. J Agr Food Chem 41:101808-101810.

17 LAWSON LD, WOOD SG, HUGHES BG, 1991 hplc analysis of allicin and other thiosulfinates in garlic clove homogenates. Planta Med 57:3263-3270.

18 MUTSCH-ECKNER M, ERDELMEIER CAJ, STICHER O, REUTER HD, 1993 A novel amino acid glycoside and three amino acids from Allium sativum. J Nat Prod 56:6864-6869.

19 INAGAKI M, HARADA Y, YAMADA K, ISOBE R, HIGUCHI R, MATSUURA H, ITAKURA Y, 1998 Isolation and structure determination of cerebrosides from garlic, the bulbs of Allium sativum L. Chem Pharm Bull 46:71153-71156.

20 AL-NAGDY SA, ABDEL-RAHMAN MO, HEIBA HI, 1988 Evidence for some prostaglandins in Allium sativum extracts. Phytother Res 2:4196-4197.

21 ROLLERI F, 1943 Occurrence of nicotinic acid and nicotinamide in curative plants. Arch Pharm (Weinheim) 281:118.

22 RAKHIMBAEV IR, OL'SHANSKAYA RV, 1981 Preliminary identification of natural gibberellins of garlic. Izv Akad Nauk Kaz Ssr Ser Biol 1981:217-222.

23 KOCH HP, JAGER W, GROH U, HOVIE JE, PLANK G, SEDLAK U, PRAZNIK W, 1993 Carbohydrates from garlic bulbs (Allium sativum L.) As inhibitors of adenosine deaminase enzyme activity. Phytother Res 7(5):387-389.

24 BAUMGARTNER S, DAX TG, PRAZNIK W, FALK H, 2000 Characterisation of the high-molecular weight fructan isolated from garlic (Allium sativum L.). Carbohydr Res 328:2177-2183.

25 PENG JP, CHEN H, QIAO YQ, MA LR, NARUI T, SUZUKI H, OKUYAMA T, KOBAYASHI H, 1996 Two new steroidal saponins from Allium sativum and their inhibitory effects on blood coagulability. Yao Hsueh Hsueh Pao 31:8607-8612.

26 MATSUURA H, USHIROGUCHI T, ITAKURA Y, FUWA T, 1989 Further studies on steroidal glycosides from bulbs, roots and leaves of Allium sativum L. Chem Pharm Bull 37:102741-102743.

27 DUKE JA, ATCHLEY AA, 1986 Handbook of proximate analysis tables of higher plants. Boca Ratón, USA: CRC Press. p13.

28 DAS I, KHAN N, SOORANA S, 1995 Potent activation of nitric oxide synthase by garlic: a basic for therapeutic application. J Med Res Opin 5(13):257-263.

29 KABELIK J, 1970 Antimicrobial properties of garlic. Pharmazie 25(4):266-270.

30 ADETUMBI M, JAVOR G, LAN B, 1986 Allium sativum (garlic) inhibits lipid synthesis by Candida albicans. Antimicrob Agents Chemother30(3):499-501.

31 TSAI Y, COLE LL, DAVIS LE, LOCKWOOD SJ, SIMMONS V, WILD GC, 1985 Antiviral properties of garlic: in vitro effects onInfluenza b, Herpes simplex and Coxsackie viruses. Planta Med 51(5):460-461.

32 SHARMA V, SETHI M, KUMAR A, RAROTRA JR, 1977 Antibacterial property of Allium sativum in vivo & in vitro studies. Indian J Exp Biol15:466.

33 FROMTLING R, BULMER G, 1978 In vitro effect of aqueous extract of garlic on the growth and viability of Cryptococcus neoformans. Mycology 70:397-400.

34 GRAHAM H, GRAHAM E, 1987 Inhibition of Aspergillus parasiticus growth andtoxin productionby garlic. Journal Food Safety 8:101-108.

35 MOLINA NM, 1992 Actividad antimicrobiana de extractos de Allium sativum. Evaluación preclínica, farmacológica y toxicológica (Tesis de graduación). Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba. p287.

36 EL-TANBOULY ND, ABDEL-MEGID RM, 1994 HPLC determination of allicin in garlic and garlic products and their antimicrobial activity. Zagazig J Pharm Sci 3(3A):120-124.

37 CACERES A, GIRON L, ALVARADO S, TORRES M, 1987 Screening of antimicrobial activity of plants popularly used in Guatemala for the treatment of dermatomucosal diseases. J Ethnopharmacol 20(3):223-237.

38 KIUCHI ,F, NAKAMURA N, MIYASHITA N, NISHIZAWA S, TSUDA Y, KONDO K, 1989 Nematocidal activity of some anthelmintics, traditional medicines, and spices by a new assay method using larvae of Toxocara canis. Shoyakugaku Zasshi 43(4):279.

39 CHOWDHURY A, AHSAN M, ISLAM SK, AHMED ZU, 1991 Efficacy of aqueous extract of garlic and allicin in experimental shiguellosis in rabbits. Indian J Med Res93(1):33-36.

40 STANDEN O, 1953 Experimental chemotherapy of oxyuriasis. Brit Med JII:757-758.

41 TAKASUGI N, KOTOO K, FUWA T, SAITO H, 1984 Effect of garlic on mice exposed to various stresses. Oyo Yakuri Pharmacolo 28(6):991-1002.

42 PRASAD DN, BHATTACHARYA SK, DAS PK, 1966 A study of antinflammatory activity of some indigenous drugs in albino rats. Indian J Med Res 54:582.

43 BHAKUNI D, DHAR ML, DHAR MM, DHAWAN B, MEHROTRA B, 1971 Screening of Indian plants for biological activity. Part III. Indian J Exp Biol 9:91.

44 AUGUSTI K, MATHEW P, 1973 Effect on long-term feeding of the aqueous extracts of onion and garlic on normal rats. Ind J Exper Biol11(3):239-240.

45 HIKINO H, TOHKIN M, KISO Y, NAMIKI T, NISHIMURA S, TAKEYAMA K, 1986 Antihepatotoxic actions of Allium sativum bulbs. Planta Med 52(3):163-168.

46 SHARAF A, 1969 Food plant as a possible factor in fertility control. Qual Plant MaterVeg17:153.

47 PRASAD G, SHARMA V, KUMAR A, 1982 Efficacy of garlic (Allium sativum L.) therapy against experimental dematophytosis in rabbits. Indian J Med Res75:465-467.

48 TUTAKNE M, BHARDWAJ J, SATYANARAYANAN G, SETHI Y, 1983 Sporotrichosis treated with garlic juice. Indian J Dermatology 28:40-47.

49 DELAHA E, GARAGUSI V, 1985 Inhibition of mycobacteria by garlic extract (Allium sativum ). Antimicrob Agents Chemother27(4):485-486.

50 PETKOV V, 1966 Pharmacological and clinical study of garlic. Dtsch Apoth Ztg 106(51):1861-1867.

51 FOUSHEE D, RUFFIN J, BANERJEE U, 1982 Garlic as a natural agent for the treatment of hypertension: a preliminary report. Cytobios34(135-136):145-152.

52 PARIS R, MOYSE H, 1981 Précis de Matière Médicale, Tome II, 2è éd. révisée. Paris, France: Ed. Masson. p61-62.

53 RIBEIRO R, BARROS F, MARGARIDA M, MELO R, MUNIZ C, CHIEIA S, WANDERLEY M, GOMES C, TROLIN G, 1988. Acute diuretic effects in conscious rats produced by some medicinal plants used in the state of Sao Paulo, Brasil. J Ethnopharmacol 24(1):19-29.

54 SPADA C, HOSHIKAWA-FUJIMURA AY, 2001 Perspectivas do emprego do Allium sativum (alho) em estudos epidemiológicos da patologia cardiovascular (conferencia). Caxambu, Brazil: Congresso da VII Reunião Anual da Federação de Sociedades de Biologia Experimental.

55 CHUTANI SK, BORDIA A, 1981 The effect of fried versus raw garlic on fibrinolytic activity in man. Therosclerosis 38:417-421.

56 DAMRAU F, FERGUSON E, 1949 The modus vivendi of carminative. The therapeutic value of garlic in functional gastrointestinal disorders. Rev Med J2:757-758.

57 YU WC, BLOT WJ, CHANG YS, ERSHOW A, ZT YANG, AN Q, FRAUMENI JR JF, WANG TG, 1989 Allium vegetables and reduced risk of stomach cancer. J Natl Cancer Inst 81(2):162-164.

58 FERNANDEZ EJ, 1995 Efecto de dos formulaciones hidroalcohólicas de Allium sativum en el tratamiento de pacientes con dermatofitosis (Tesis de especialidad en farmacología). Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba.

59 ALONSO JR, 1998 Tratado de fitomedicina. Bases clínicas y farmacológicas. Buenos Aires, Argentina: Ed. ISIS S.R.L. p208.

60 DURAFFOURD C, D'HERVICOURT L, LAPRAZ JC, 1994 Cahiers de phytothérapie clinique. Paris, France: Revue de la Societé Française de Phytothérapie et Aromathérapie.

61 CHAUHAN L, GARG J, BEDI H, GUPT R, BOMB B, AGARWAL M, 1982 Effect of onion, garlic and clofibrate on coagulation and fibrinolytic activity of blood in cholesterol fed rabbits. Indian Med J 76(10):126-127.

62 KANEZAWA A, NAKAGAWA S, SUMIYOSHI H, MASAMOTO K, HARADA H, NAKAGAMI S, DATE S, YOKOTA A, NISHIKAWA M, FUWA T, 1984 General toxicity tests of garlic extract preparation contained vitamins (Kyoleopin). Pharmacometrics 27(5):909-929.

63 SUMIYOSHI H, KANEZAWA A, MASAMOTO K, HARADA H, NAKAGAMI S, YOKOTA A, NISHIKAWA M, NAKAGAWA S, 1984 Chronic toxicity test of garlic extract in rats. J Toxicol Sci 9:61-75.

64 AL-BEKAIRI AM, SHAH AH, QURESHI S, 1990 Effect ofAllium sativum on epididymal spermatozoa, estradiol-treated mice and general toxicity. J Ethnopharmacol 29(2):117-125.

65 HUH K, PARK JM, LEE S-IL, 1985 Effect of garlic on the therapeutic glutathione S-transferase and glutathione peroxidase activity in rat. Arch Pharm Res 8(4):197-203.

66 GARNIER G, BEZANGER-BEAUQUESNE L, 1961 Ressources médicinales de la flore française. Paris, France: Ed. Vigot Frères.

67 BOJS G, SVENSSON A, 1988 Contact allergy to garlic used for wound healing. Contact Derm18(3):179-181.

68 PAPAGEORGION C, CORBET JP, BRANDAO FM, PECEGUEIRO M, BENEZIA C, 1983. Allergic contact dermatitis to garlic (Allium sativum) identification of the allergens the role of mono-di and trisulfides present in Garlic. A comparative study in man and animal. Arch Dermatol Res 275(4):229-234.

69 CAPORASO N, SMITH S, ENG R, 1983 Antifungal activity in human urine and serum after ingestions of garlic. Antimicob Agents Chemother23(5):700-702.

70 SITPRIJA S, PLENGVIDHYA C, KANGKAYA V, BHUVAPANICH S, TUNKAYOON M, 1987. Garlic and diabetes mellitus phase III clinical trial. J Med Assoc 70(2):223-227.

71 WHO, 2004 Allium sativum. WHO monographs on selected medicinal plants. Volume 1. Bulbis Alii Sativi. Ginebra, Suiza, Oct.28,2004. URL: http://www.who.int/medicines/library/trm/medicinalplants/monograph_volume_one.shtml

72 MARTINEZ MJ, MOREJON Z, LOPEZ M, BOUCOURT E, FUENTES V, MORON F, 2005 Irritabilidad dérmica primaria de bulbo fresco machacado de Allium sativum L. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Medicina “Dr. Salvador Allende”, Cerro, C. Habana, Cuba.

73 MARTINEZ MJ, MOREJON Z, LOPEZ M, BOUCOURT E, FUENTES V, MORON F, 2005 Clases tóxicas agudas (CTA) de una decocción de bulbo de Allium sativum L. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba.

74 BOULOGNE Isabelle, 2008 Enquête TRAMIL, Les Saintes, UAG, Guadeloupe (FWI).

75 LONGUEFOSSE JL, NOSSIN E, 1990-95 Enquête TRAMIL. Association pour la valorisation des plantes médicinales de la Caraïbe AVPMC, Fort de France, Martinique

FORMAL DESCARGO

La información presentada es para fines educativos para el público general y los profesionales de la salud. No pretende reemplazar ninguna regulación o disposición legal. Debido a que algunas partes de plantas pueden eventualmente presentar toxicidad, inducir efectos adversos o interacciones con medicamentos, cualquiera que desee usar este recurso o sus productos derivados debería consultar al médico u otro profesional de la salud calificado. TRAMIL no se hace responsable del uso para una decisión, acción u omisión que se haga a partir de la información contenida en esta Farmacopea.