Anethum graveolens

nombre científico: 
Anethum graveolens L.
sinónimo: 
Peucedanum graveolens Benth. & Hook. f.
Familia botánica: 

Descripción botánica

Planta herbácea erguida de hasta 1.7 m de alto, glabra y glauca. Hojas alternas, oblongas a obovadas de hasta 35 cm, tripinnadas con los últimos segmentos filiformes; vainas peciolares de 1-3 cm de longitud. Inflorescencias con umbelas terminales y laterales; flores numerosas de pétalos amarillos. Fruto ovado-elíptico, glabro, de hasta 4 mm de longitud, compreso dorsalmente, costillas estrechamente aladas, las 2 laterales más amplias.

Con frecuencia esta especie es confundida con Foeniculum vulgare, el cual tiene una vaina peciolar más larga y todas las costillas del fruto son iguales.

Voucher(s)

Arvigo,1064,JBSD

Fuentes,4644,ROIG

Longuefosse&Nossin,108,HAVPM

dolor de estómago:

  semilla y hoja, decocción, vía oral1

dolor abdominal:

  semilla, decocción, vía oral1

flatulencia:

  semilla, decocción, vía oral1

Las partes aéreas deAnethum graveolens constituyen un condimento de consumo humano relativamente extendido.

Para dolor de estómago, dolor abdominal y flatulencias:

Preparar una decocción con 15-30 gramos (2-3 cucharadas) de semillas en 1 litro (4 tazas) de agua; hervir por un mínimo de 10 minutos en un recipiente tapado. Filtrar y tomar 1 taza después de cada comida24.

Nota relativa a los usos : Para ambos usos se describe principalmente en asociación con Eupatorium aromatisans, Lippia micromera o sal.

De acuerdo con la información disponible:

El uso para dolor abdominal, flatulencias y dolor de estómago se clasifica como REC con base en el empleo significativo tradicional documentado en las encuestas TRAMIL y la información científica publicada.

No usar en mujeres con intención de procrear, durante el embarazo, la lactancia ni en niños menores de 5 años.

En caso de que se observe un deterioro del paciente o que el dolor de estómago o abdominal persista por más de 3 días debe buscar atención médica.

Trabajo TRAMIL25

El extracto acuoso (decocciòn 30% peso/volumen) de semilla seca, por vía oral (2000 y 5000 mg de masa vegetal/kg, dosis única), en ratón Suiss OF-1 (5 machos y 5 hembras en cada grupo), modelo de DL50, el grupo control fue tratado con agua. El mismo extracto y vía de administración (2000 mg de masa vegetal/kg, dosis única), a rata Sprague Dawley (3 machos y 3 hembras), modelo de clases tóxicas agudas, no causaron ninguna muerte. No fueron detectados signos de reacciones adversas durante 14 días de observación y no ocurrió daño histológico en los órganos.

La DL50 del extracto hidroalcohólico (1:1) de fruto, por vía intraperitoneal a ratón, fue de 1 g/kg y la dosis máxima tolerada fue de 500 mg/kg12.

El extracto acuoso de partes aéreas (50 mg peso seco de material vegetal/disco) en el modelo de Salmonella typhimurium TA98 con activación metabólica, mostró actividad antimutagénica in vitro21.

El extracto acuoso de hoja (175 mg/kg) por vía oral a rata gestante, indujo efecto teratogénico y embriotóxico22.

La administración de partes aéreas (33% de la dieta diaria) durante 450 días continuos a rata de la cepa ACI de ambos sexos, no indujo carcinogénesis23.

El aceite esencial causa fotodermatitis y en dosis elevada es convulsivante17.

No se dispone de información que documente la toxicidad de su uso en niños o durante la lactancia.

La parte aérea y la semilla contienen flavonoides: canferol, quercetina, ramnetina, luteolina2-3, rutina4; cumarinas: aesculetina, bergapteno5, glicósidos cumarínicos, escopoletina6.

El fruto posee aceite esencial (3-4%) cuyos componentes principales son: dihidrocarvona (40%)7, limoneno, felandreno, dipenteno, carvona, miristicina y pineno8.

Análisis proximal de 100 g de semilla9: calorías: 305; agua: 7.7%; proteínas: 16%; grasas: 14.5%; carbohidratos: 55.2%; fibras: 21.1%; cenizas: 6.6%; calcio: 1516 mg; fósforo: 277 mg; hierro: 16.3 mg; sodio: 20 mg; potasio: 1186 mg; caroteno: 32 µg; tiamina: 0.42 mg; riboflavina: 0.28 mg; niacina: 2.81 mg.

El extracto etanólico (95%) de hoja y tallo (4 mg/mL) mostró actividad antibacteriana contra Escherichia coli, Shigella dysenteriae y Salmonella typhi en placa de agar10.

El extracto acuoso de hoja seca (10 mg/mL) en modelo in vitro de Toxocara cannis mostró débil actividad nematicida11.

El extracto hidroalcohólico (1:1) de fruto inhibió las contracciones inducidas por acetilcolina o histamina en íleon aislado de cobayo12.

A la semilla se le atribuye efecto vasodilatador arteriolar dosis dependiente similar al efecto de la acetilcolina, demostrado por la técnica de Mac Gregor13.

Al fruto se le atribuyó efecto: hipoglucemiante (250 mg/kg por vía oral a rata), hipotensor12, galactógeno14 y antitumoral15.

La Comisión Alemana E tiene aprobado el fruto o la semilla seca para las dispepsias16-17.

 

El aceite esencial (2%) mostró efecto antiespumante in vitro, a lo cual se atribuye la actividad carminativa18. En el modelo de duodeno aislado de conejo (50 mg/mL), se evidenció actividad antiespasmódica19.

 

En las diferentes partes de esta planta, se han determinado compuestos químicos a los que se les atribuye actividad antiespasmódica20.

Referencias:  

1 GERMOSEN-ROBINEAU L, GERONIMO M, AMPARO C, 1984 Encuesta TRAMIL. enda-caribe, Santo Domingo, Rep. Dominicana.

2 HARBONE J, WILLIAMS C, 1972 Flavonoid pattern in the fruits of the Umbelliferae. Phytochemistry 11:1741-1750.

3 DANIEL M, 1989 Polyphenols of some Indian vegetables. Curr Sci 58(23):1332-1334.

4 VARNAITE R, 1988 Rutin content in capsicum, capsella, urtica, primula, lepidium, lactuca, brassica, anethum, beta, petroselinum, Allium genera representatives. Liet Tsr Mokslu Akad Darb Ser C 4:29-32.

5 DRANIK LI, PROKOPENKO AP, 1969 Coumarins and acids from Anethum graveolens fruit. Khim Prir Soedin 55:437.

6 APLIN RT, PAGE CB, 1967 Constituents of native Umbelliferae. I. Coumarins from dill (Anethum graveolens). J Chem Soc C 23:2593-2596.

7 PUNDARIKAKSHUDU K, BHAVSAR G, 1991 Effect of ascorbic acid on the yield & quality of essential oils in Indian dark variyali sowa (Anethum sowa). Int J Pharmacog 29(1):57-61.

8 PINKAS M, BEZANGER-BEAUQUESNE L, 1986 Les plantes dans la thérapeutique moderne. 2è éd. Paris, France: Ed. Maloine.

9 DUKE JA, ATCHLEY AA, 1986 Handbook of proximate analysis tables of higher plants. Boca Raton, USA: CRC Press. p17.

1O IKRAM M, HAQ I, 1980 Screening of medicinal plants for antimicrobial activity. Fitoterapia 51:281-284.

11 KIUCHI F, NAKAMURA N, MIYASHITA N, NISHIZAWA S, TSUDA Y, KONDO K, 1989 Nematocidal activity of some antihelmintic traditional medicines, and species by a new assay method using larvae of Toxocara canis. Shoyakugaku Zasshi 43(4):279-287.

12 DHAR ML, DHAR MM, DHAWAN BN, MEHROTRA BN, RAY C, 1968 Screening of Indian plants for biological activity. Part I. Indian J Exp Biol 6:232-247.

13 LOREA PAGANINI F, SILVEIRA SN, AMARANTE SILVA F, VENSKE DE ALMEIRA TR, SINNOTT SILVA E, 1992 Triagem farmacologica de chas comercializados - estudo do mecanismo de açao. Laboratorio de farmacologia, Rio Grande - Apresentado no VII Reunião Anual da Federação de Sociedades de Biologia Experimental, Caxambú, Brazil.

14 FEIZ J, MOATTAR F, 1985 Formulation, preparation and evaluation of medicinal plants on quantity and quality of human milk (conference). Chapel Hill, USA: Internat. Res. Cong. Nat. Prod., Coll. Pharm. Univ. Carolina.

15 CHANG I, WOO W, 1980 Screening of Korean medicinal plants for antitumor activity. Arch Pharm Res 3(2):75-78.

16 PDR Herbal, 2000 Anethum graveolens. Physician Desk Reference (PDR) for Herbal Medicines, Montvale, USA: Medical Economics Company. p252.

17 CANIGUERAL S, VILA R, RISCO E, PEREZ F, PORTILLO A, FREIXA B, MILO B, VANACLOCHA B, RIOS JL, MORALES MA, ALONSO JR, BACHILLER LI, PERIS JB, STUBING G, 2002 Anethum graveolens. Vademecum de Fitoterapia, Editorial Masson, Barcelona, España, Jul.20,2002. URL: http://www.masson.es/book/fitoterapia.html

18 HARRIES N, JAMES KC, PUGH WK, 1978 Antifoaming and carminative actions of volatile oils. J Clin Pharmacol 2:171-177.

19 SHIPOCHLIEV T, 1968 Pharmacological investigations into several essential oils, first communication. Effect on the smooth musculature. Vet Med Nauki 56:63.

20 DUKE JA, 1992 Handbook of biologicaly active phytochemicals and their activities. Boca Raton, USA: CRC Press.

21 NATAQUE K, KANZAWA K, MIZUNO M, UENO N, KOBAYASHI T, DANNE GI, MINAMOTO S, 1989 Herb water-extracts markedly suppress the mutagenicity of TRP-P-2. Agr Biol Chem 53(5):1423-1425.

22 SETHI N, NATH D, SINGH RK, 1989 Teratological evaluation of some commonly used indigenous antifertility plants in rats. Int J Crude Drugs Res 27(2):118-120.

23 FUKUOKA M, YOSHIHIRA K, NATORI S, SAKAMOTO K, IWAHARA S, HOSAKA S, IRONO I, 1980 Characterization of mutagenic principle and carcinogenicity test of dill weed and seeds. J Pharmacobio Dyn 3(5):236-244.

24 ALBORNOZ A, 1993 Medicina tradicional herbaria. Guía de Fitoterapia. Caracas, Venezuela: Editorial Instituto Farmacoterápico Latino S.A. p87,122.

25 MARTINEZ MJ, BETANCOURT J, LOPEZ M, MOREJON Z, BARCELO H, LAINEZ A, MONTES ME, REGO R, BOUCOURT E, MORON F, 2000 Toxicidad aguda clásica y clases tóxicas agudas de semilla seca deAnethum graveolens. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba.

26 LONGUEFOSSE JL, NOSSIN E, 1990-95 Enquête TRAMIL. Association pour la valorisation des plantes médicinales de la Caraïbe AVPMC, Fort de France, Martinique.

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