Mangifera indica

nom scientifique : 
Mangifera indica L.
Famille : 

Distribution géographique

Originaire du sud-est asiatique, cultivée dans les zones tropicales et subtropicales du monde entier.

Description botanique

Arbre de 10 à 15 m ou davantage, tête dense, arrondie; écorce résineuse. Feuilles alternes, oblongues-lancéolées, pointues ou acuminées, subcoriaces. Fleurs verdâtres ou jaunâtres, odorantes, en grandes panicules; pétales de 5 mm, glabres. Drupe ellipsoïdale à obliquement réniforme, de 5 à 15 cm, mésocarpe charnu, jaune, aigre-doux.

Voucher(s)

Girón,188,CFEH

Girón,810,CFEH

Graveson,1586,SLNH

toux :

  feuille, décoction, voie orale1

pneumopathie :

  feuille, décoction, voie orale3

bronchite (expectorante) :

  fleur, décoction, voie orale1

asthénie, faiblesse :

  feuille, infusion, voie orale1

indigestion :

  feuille, infusion, voie orale2

Les fruits de Mangifera indica constituent un aliment de consommation humaine relativement répandu.

Contre la toux et la pneumopathie :

Préparer une décoction avec 15-20 feuilles dans 1 litre d’eau, faire bouillir au moins 10 minutes dans un récipient couvert, laisser refroidir et boire 1 tasse 3 fois par jour44.

Contre la bronchite, l’indigestion et l’asthénie :

Préparer une infusion, en ajoutant 250 mL (1 tasse) d’eau bouillante à 3 feuilles. Recouvrir le récipient, laisser reposer pendant 5-10 minutes, filtrer et boire 1 tasse 3 fois par jour.

Toute préparation médicinale doit être conservée au froid et utilisée dans les 24 heures.

Selon l’information disponible :

L’emploi contre l’indigestion (aigreur d’estomac) est classé REC sur la base de l’usage significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL, les études de toxicité, la validation et l’information scientifique publiée.

L’emploi de la fleur contre les bronchites est classé REC sur la base de l’usage significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL et les études de toxicité.

L’emploi de la feuille contre l’asthénie, la pneumopathie et la toux est classé REC sur la base de l’usage significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL et les études de toxicité.

Si l’état du patient se détériore, ou si la bronchite, la pneumopathie et la toux durent plus de 2 jours, consulter un médecin.

•Travail TRAMIL28

Les extraits hydroalcooliques (70%) de fleur et de feuille séchée n’a été montré de toxicité. Cet extrait a été administré oralement à 5 souris mâles (dose maximum de 5 g/kg) et 5 autres animaux utilisés comme témoin ont ingéré une solution saline. Les analyses ont été effectuées 30, 60, 120, 240 et 360 minutes après l’application des traitements et quotidiennement pendant 14 jours après l’ingestion, sans montrer d'effet significatif sur la mortalité, le comportement, la prise de poids quotidienne ni le poids des organes vitaux (foie, coeur, reins et poumons).

•Travail TRAMIL41

L’extrait aqueux de feuille (décoction) (50%), suivant la méthodologie proposée par Turner, a présenté une DL1 orale supérieure à 25 g/kg de poids et une DL50 intrapéritonéale de 2,32 ± 0,35 g/kg.

La toxicité sub-chronique a révélé que la dose maximum de 25 g/kg, administrée par voie orale, n’a pas entraîné la mort 28 jours après l’administration. D’autre part, aucun changement histopathologique n’a été mis en évidence 60 jours après le traitement.

•Travail TRAMIL42

L’extrait aqueux lyophilisé, obtenu par décoction de fleur fraîche a été administré par voie orale (5 g/kg), quotidiennement pendant 5 jours consécutifs à 10 souris de souche NGP (5 mâles et 5 femelles). Le contrôle a été réalisé avec de l’eau distillée (0,5 mL) administrée à 10 autres souris de mêmes caractéristiques. La période d’observation a duré 7 jours après la fin de l’administration du traitement et du contrôle. Pendant l’expérience, il n’y a pas eu de mortalité ni de signes de toxicité dans les paramètres évalués.

La feuille, la branche et l’écorce présentent quelques constituants toxiques qui peuvent occasionner une irritation de la muqueuse gastrique et rénale43.

L’extrait hydroalcoolique (1:1) de parties aériennes séchées administré par voie intrapéritonéale à la souris a montré une DL50 supérieure à 1 g/kg40.

On ne dispose pas d’information garantissant l’innocuité de son emploi médicinal avec des enfants, ni avec des femmes enceintes ou allaitantes.

La feuille a été amplement étudiée et contient, entre autres composants, des sesquiterpènes : allo-aromadendrène4; des flavonoïdes : epi-3-O-galato(-)-catéchine5, camphérol, quercétine6, rutine7; de l’huile essentielle4,8; des xanthones : euxanthone6, mangiférine5,9-10, homo-mangiférine9,iso-mangiférine5,9; des triterpènes11; des benzénoïdes9,12; des tanins5; des stéroïdes : b-sitostérol11.

Le bourgeon contient des benzénoïdes : méthyl-6-(O-triméthyl-galloïl)-2,4-diméthoxy-benzoate; des flavonoïdes : 5-hydroxy-3,3',4',7-tétraméthoxy-flavone, méthoxy-camphérol, méthoxy-myricétine, méthoxy-quercétine, méthoxy-quercitrine; des triterpènes : lupénone, lupéol, acide ursolique; des xanthones : pentaméthoxy et tétraméthoxy-xanthone13.

La fleur contient des benzénoïdes : dérivés de l’acide gallique14-15.

La graine, l’écorce de la tige, la racine et le fruit ont été amplement étudiés16-23.

Analyse proximale pour 100 g de feuille fraîche24 : calories : 66; eau : 81,7%; protéines : 0,7%; lipides : 0,4%; glucides : 16,8%; fibres : 0,9%; cendres : 0,4%; calcium : 10 mg; phosphore : 13 mg; fer : 0,4 mg; sodium : 7 mg; potassium : 189 mg; carotène : 2880 µg; thiamine : 0,05 mg; riboflavine : 0,05 mg; niacine : 1,1 mg; acide ascorbique : 35 mg.

•Travail TRAMIL25

L’extrait aqueux lyophilisé de feuille fraîche (infusion), a été administré oralement, en dose unique (5 g/kg), à 10 souris NGP (5 mâles et 5 femelles). Le contrôle a été réalisé avec de l’eau distillée (0,5 mL) sur 10 autres souris de mêmes caractéristiques. L’extrait augmente le transit intestinal de manière significative. Parcours moyen groupe contrôle = 54,88%. Parcours moyen groupe traitement = 65,34%.

•Travail TRAMIL26

La décoction pendant 10 minutes de fleur séchée, in vitro à 2 mg/mL sur plaques d’agar-agar a inhibé la croissance de Candida albicans ATCC10231 (CIM : 0,5 mg/mL); mais elle n’a inhibé la croissance d’aucun des autres micro-organismes étudiés : Pseudomonas aeruginosa ATCC27853,Salmonella typhi ATCC14028, Staphylococcus aureus ATCC6558 et Cryptococcus neoformans C13.

•Travail TRAMIL27

L’extrait aqueux lyophilisé, obtenu par décoction de fleur fraîche a été administré au bain d’organes, lequel contient des anneaux de trachée de cobaye dans un milieu nutritif. La température du bain est maintenue à 36ºC, la tension initiale est de 2 g et la préparation reste oxygénée au moyen d’un carbogène (à raison de 95% O2 et 5% CO2). Avant l’administration de l’extrait, l’anneau se contracte avec 80 millimoles de KCl. Dans ces conditions, l’extrait ne possède pas d’action bronchodilatatrice.

•Travail TRAMIL28

Les extraits hydroalcoolique (70%) de fleur et de feuille sèches ont été administrés oralement (250, 500 et 1000 mg/kg), dans plusieurs modèles expérimentaux d'induction de lésions gastriques. L'extrait de fleur (0,5 et 1 g/kg), a diminué significativement les lésions provoquées par l'éthanol acidifié (éthanol 60% dans 0,3 môles/L d'HCl) ainsi que le stress provoqué par le froid et l'immobilisation sur la souris, de même que les lésions causées au rat par l'éthanol absolu. L'extrait de feuille (1 g/kg) a pour sa part diminué significativement les lésions provoquées par l'éthanol acidifié sur l'estomac de rat.

La décoction et la macération de 30 g d’écorce ou de feuille dans 1 L d’eau a été reportée comme antidiarrhéique et la décoction de 30 g de feuille dans 1 L d’eau comme diurétique29.

L’extrait méthanolique de feuille administré par voie sous-cutanée à une dose non précisée a été actif comme oestrogène chez la souris femelle30.

Le jus de la feuille crue non dilué a été inactif comme antiviral contre la mosaïque du haricot rouge31.

L’extrait éthanolique à 60% de feuille à une concentration non précisée a été inactif comme antimicrobien contre Candida albicans32.

L’extrait éthanolique (95%) de feuille séchée non dilué a été actif contre Escherichia coli et Staphylococcus aureus33, l’extrait aqueux a été actif contre Actinomycete sp, Bacteroides gingivalis, Pseudomonas accharophila, Streptococcus salivarius, et S. Viridans34. La décoction non diluée a été inactive contre Escherichia coli et Staphylococcus aureus33.

L’extrait aqueux de feuille séchée à une concentration variable a été actif comme antinématode contre Meloidogyne incognita35. Administré oralement (10 mg/kg) il n’a pas induit d’hypoglycémie chez le lapin36.

La décoction de feuille séchée non diluée a été active contre Sarcina lutea et Staphylococcus aureus et inactive contre Aspergillus niger, Mycobacterium phlei et Saccharomyces cerevisiae37.

L’extrait éthanolique (80%) du lyophilisé de feuille congelée à une concentration variable n’a pas montré d'activité antivirale claire contre Coxsackie B2, measles, Polyovirus I, Adénovirus, Herpes type 1, Semlicki-forest38.

L’extrait aqueux de feuille séchée a été faiblement actif comme molluscicide contreBiomphalaria pfeifferi39.

L’extrait hydroalcoolique (1:1) de parties aériennes a été actif comme stimulant utérin chez le rat. Administré par voie intrapéritonéale (250 mg/kg) il a été inactif comme antitumoral contre LEUK-P388, à 25 µg/mL il n’a pas été cytotoxique contre CA-9KB40.

Références :  

1 GIRON L, 1988 Encuesta TRAMIL (Costa atlántica). Centro Mesoamericano de Tecnología CEMAT, Guatemala, Guatemala.

2 JEAN-PIERRE L, 1988 TRAMIL survey. St. Lucia national herbarium, Castries, St. Lucia

3 WENIGER B, ROUZIER M, 1986 Enquête TRAMIL. Service Oecuménique d'Entraide SOE, Port au Prince, Haïti.

4 CRAVEIRO AA, ANDRADE CH, MATOS FJ, ALENCAR JW, MACHADO MI, 1980 Volatile constituents of Mangifera indica Linn. Rev Latinoamer Quim 11:129.

5 TANAKA T, SUEYASU T, NONAKA G-I, NISHIOKA I, 1984 Tannins and related compounds. XXI. Isolation and characterization of galloyl and p-hydroxybenzoyl esters of benzophenone and xanthone c-glucosides from Mangifera indica L. Chem Pharm Bull 32(7):2676-2686.

6 PROCTOR JTA, CREASY LL, 1969 The anthocyanin of the mango fruit. Phytochemistry 8:2108.

7 SHAFT N, IKRAM M, 1982 Quantitative survey of rutin-containing plants. Part 1. Int J Crude Drug Res 20(4):183-186.

8 NIGAM IC, 1962 Studies in some Indian essential oils. Agra Univ J Res Sci 11:147-152.

9 LU ZY, MAO HD, HE MR, LU SY, 1982 Studies on the chemical constituents of mangguo (Mangifera indica) leaf. Chung Ts'ao Yao 13:3-6.

10 PHARM XS, PHARM GK, 1991 The extraction and determination of the flavonoid mangiferin in the bark and leaves of Mangifera indica. Tap Chi Duoc Hoc 5:8-19.

11 ANJANEYULU V, HARISCHANDRA PRASAD K, SAMBASIVA RAO G, 1982 Triterpenoids of the leaves of Mangifera indica. Indian J Pharm Sci 44:58-59.

12 GRIFFITHS LA, 1959 On the distribution of gentisic acid in green plants. J Exp Biol 10:437-442.

13 GHOSAL S, BISWAS K, CHATTOPADHYAY BK, 1978 Differences in the chemical constituents of Mangifera indica infected with Aspergillus niger and Fusarium moniliformae. Phytochemistry 17:689-694.

14 KHAN MA, KHAN MNI, 1989 Alkyl gallates of flowers of Mangifera indica. Fitoterapia 60(3):284.

15 KHAN MA, KHAN MNI, 1993 Studies in the chemical constituents of flowers of Mangifera indica. Part-II. Isolation and characterization of some alkylgallates from blossoms of Mangifera indica. Pak J Sci Ind 35(7/8):276-278.

16 BANDYOPADHYAY C, 1983 Contribution of gas chromatography to food flavor research. Pafai J 5(3):26-30.

17 SAEED AR, KARAMALLA KA, KHATTAB AH, 1976 Polyphenolic compounds in the pulp of Mangifera indica L. J Food Sci 41(4):959-960.

18 MAC LEOD AJ, DE TROCONIS NG, 1982 Volatile flavour components of mango fruit. Phytochemistry 21:2523-2526.

19 GAYDOU EM, BOUCHET P, 1984 Sterols, methyl sterols, triterpene alcohols and fatty acids of the kernel fat of different Malagasy mango (Mangifera indica) varieties. J Amer Oil Chem Soc 61(10):1589-1593.

20 ANJANEYULU V, RAVI K, HARISCHANDRA PRASAD K, CONNOLLY JD, 1989 Triterpenoids from Mangifera indica. Phytochemistry 28(5):1471-1477.

21 ANJANEYULU V, HARISCHANDRA K, RAVI PK, CONNOLLY JD, 1985 Triterpenoids from Mangifera indica. Phytochemistry 24(10):2359-2367.

22 ANJANEYULU V, HARISCHANDRA PRASAD K, SAMBASIVA RAO G, INDIAN J, 1982 Triterpenoids of the root-bark of Mangifera indica. Pharm Sci 44(4):85-87.

23 KHAN MA, NIZAMI SS, KHAN MNI, AZEEM SW, AHMED Z, 1994 New triterpenes from Mangifera indica. J Nat Prod 57(7):988-991.

24 DUKE JA, ATCHLEY AA, 1986 Handbook of proximate analysis tables of higher plants. Boca Raton, USA: CRC Press. p105.

25 GarcIa GM, Coto MT, GonzAlez CS, Pazos L, 1998 Velocidad del tránsito intestinal en ratón, del extracto acuoso de hoja fresca de Mangifera indica. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos LEBi, Escuela de Medicina, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

26 CACERES A, GONZALEZ S, GIRON L, 1998 Demostración de la actividad antimicrobiana de plantas tramil en base a los usos populares en la cuenca del Caribe. Informe TRAMIL. Laboratorio de productos fitofarmacéuticos Farmaya y Facultad de Ciencias Químicas y Farmacia, Universidad de San Carlos, Guatemala, Guatemala.

27GarcIa GM, Coto MT, GonzAlez CS, Pazos L, 1999 Actividad bronquial del extracto acuoso de flores frescas de Mangifera indica. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos LEBI, Escuela de Medicina, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

28 SOUZA BRITO ARM, HIRUMA-LIMA CA, LIMA ZP, 2003 Atividades biológicas obtidas dos extratos hidroalcoólicos das folhas e flores da Mangifera indica. Informe TRAMIL, Depto. Fisiologia, Inst. Biociências UNESP, Botucatu, SP y Depto. Fisiologia, Inst. Biologia, UNICAMP, Campinas, Sao Paulo, Brasil.

29 POUSSET J, 1989 Plantes médicinales africaines. Utilisation pratique. Paris, France: ACCT.

30 RAY BN, PAL AK, 1967 Estrogenic activity of tree leaves as animal feed. Indian J Physiol Allied Sci 20:6.

31 TRIPATHI RKR, TRIPATHI RN, 1982 Reduction in bean common mosaic virus (bcmv) infectivity vis-a-vis crude leaf extract of some higher plants. Experientia 38(3):349-349.

32 CACERES A, JAUREGUI E, HERRERA D, LOGEMANN H, 1991 Plants used in Guatemala for the treatment of dermatomucosal infections. 1: Screening of 38 plant extracts for anticandidal activity. J Ethnopharmacol 33(3):277-283.

33 GEORGE M, PANDALAI KM, 1949 Investigations on plant antibiotics. Part IV. Further search for antibiotic substances in Indian medicinal plants. Indian J Med Res 37:169-181.

34 PATEL VK, VENKATAKRISHNA-BHATT H, 1988 Folklore therapeutic indigenous plants in periodontal disorders in India (review, experimental and clinical approach). Int J Clin Pharmacol Ther Toxicol 26(4):176-184.

35 VIJAYALAKSHIMI K, MISHRA SD, PRASAD SK, 1979 Nematicidal properties of some indigenous plant materials against second stage juveniles of Meloidogyne incognita (koffoid and white) chitwood. Indian J Entomol 41(4):326-331.

36 JAIN SR, SHARMA SN, 1967 Hypoglycaemic drugs of Indian indigenous origin. Planta Med 15(4):439-442.

37 MALCOLM SA, SOFOWORA EA, 1969 Antimicrobial activity of selected Nigerian folk remedies and their constituent plants. Lloydia 32:512-517.

38 VAN DEN BERGHE DA, IEVEN M, MERTENS F, VLIETINCK AJ, LAMMENS E, 1978 Screening of higher plants for biological activities. II. Antiviral activity. J Nat Prod 41: 463-467.

39 KLOOS H, THIONGO FW, OUMA JH, BUTTERWORTH AE, 1987 Preliminary evaluation of some wild and cultivated plants for snail control in Machakos district, Kenya. J Trop Med Hyg 90(4):197-204.

40 ASWAL BS, BHAKUNI DS, GOEL AK, KAR K, MEHROTRA BN, MUKHERJEE KC, 1984 Screening of Indian plants for biological activity: Part X. Indian J Exp Biol 22(6):312-332.

41 HERRERA J, 1992 Determinación de parámetros farmacológicos usados en medicina tradicional popular en la cuenca del Caribe. Informe TRAMIL. Dep. de Farmacología, Facultad de Salud, Universidad del Valle, Cali, Colombia.

42 GarcIa GM, Coto MT, GonzAlez CS, Pazos L, 2000 Toxicidad aguda en ratones, del extracto acuoso de flores frescas de Mangifera indica. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos LEBi, Escuela de Medicina, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

43 OLIVER-BEVER B, 1986 Medicinal plants in tropical West Africa. Cambridge, USA: Cambridge University Press.

44 GUPTA MP, ARIAS TD, CORREA M, LAMBA SS, 1979 Ethnopharmacognostic observations on Panamanian medicinal plants. Part I. Q J Crude Drug Res 17(3/4):115-130.

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