Senna occidentalis

nom scientifique : 
Senna occidentalis (L.) Link
Famille : 

Distribution géographique

Pantropicale et subtropicale.

Description botanique

Herbacée pouvant atteindre 2 m de haut, en forme de mince quenouille. Feuilles alternes, pennées, disposées en spirales; folioles formant 3 à 6 paires, ovés à lanceolés, aigus à acuminés; pétiole avec une glande à la base, sessile, arrondie ou conique; stipules linéaire-lanceolées à triangulaires, acuminées, caduques. Grappes axillaires avec fleurs jaunes; sépales oblongs, obtus; pétales ovés ou elliptiques. Gousse linéaire, obtuse, mucronée, dressée, plus ou moins arquée, avec de nombreuses graines ovoïdes.

Voucher(s)

Jiménez,29&116,JBSD

Lagos-Witte,16,HPMHV

Girón,249,CFEH

Rouzier,225,SOE

fièvre :

feuille et racine, décoction, application locale en cataplasme3

mal de tête :

feuille, cataplasme, application sur le front2

fièvre :

feuille, décoction, voie orale1

jaunisse :

feuille, décoction, voie orale2

douleurs générales :

feuille, décoction, voie orale3

affections cutanées :

feuille, pressée, application locale1

douleur d'estomac :

feuille, infusion, voie orale4

mauvais sang :

feuille, jus, friction de la peau1

douleur d'estomac :

racine et feuille écrasées, décoction, voie orale3

mal de gorge :

racine et feuille, à sucer5

plaie, blessure :

graine, écrasée, application locale en cataplasme4

teigne :

graine, écrasée, application locale en cataplasme4

douleurs générales :

graine, écrasée, bains3

Contre les affections de la peau :

Nettoyer la lésion à l’eau bouillie et au savon. Laver soigneusement 30–50 grammes de feuille (15-20 folioles), les écraser et les appliquer localement en quantité suffisante pour recouvrir la zone affectée. Recouvrir d’une compresse ou d’un linge propre et changer 3-4 fois par jour.

Contre les maux d’estomac :

Préparer une décoction avec 15 grammes de feuille (7-10 folioles) et 15 grammes de racine dans 1 litre (4 tasses) d’eau, faire bouillir au moins 10 minutes dans un récipient couvert. Filtrer, laisser refroidir et boire 1 tasse 3 fois par jour36.

Contre le mal de tête, la fièvre, la jaunisse, le mal de gorge et les douleurs générales : Se référer à l'usage rapporté au chapitre Emplois traditionnels significatifs TRAMIL, les informations scientifiques disponibles ne permettant pas de définir un dosage plus précis.

Toute préparation médicinale doit être conservée au froid et utilisée dans les 24 heures.

L’emploi contre lamauvaise qualitédu sangfait partie intégrante du fonds culturel de nos communautés et n’est pas classé dans les catégories définies par TRAMIL.

Selon l’information disponible :

L’emploi de la feuille contre les affections de la peau, les maux de tête, les douleurs générales, le mal de gorge, la fièvre et la jaunisse, ainsi que l’emploi de la graine contre les plaies et la teigne sont classés REC sur la base de l’usage significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL, les études de toxicité et l’information scientifique publiée.

Toute application locale doit se conformer à de strictes mesures d’hygiène pour éviter la contamination ou une infection supplémentaire.

L’emploi de la feuille contre les maux d’estomac, de la graine contre les douleurs générales, de la racine contre les maux d’estomac, le mal de gorge et la fièvre, est classé REC sur la base de l’usage significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL et les études de toxicité.

Si l’état du patient se détériore, si la fièvre dure plus 2 jours, ou si la jaunisse, les maux d’estomac ou de gorge durent plus de 3 jours, ou encore si l’affection cutanée persiste au-delà de 5 jours, consulter un médecin.

La jaunisse représentant un risque pour la santé, consulter un médecin au préalable. L’emploi de ce remède doit être considéré comme un complément du traitement médical, sauf contre-indication.

Ne pas employer avec des enfants de moins de 3 ans, ni avec des femmes enceintes ou allaitantes.

•Travaux TRAMIL26-27

Les extraits aqueux (décoction) de feuille et de racine fraîches lyophilisés, administrés oralement à 10 souris NGP (5 mâles et 5 femelles), à raison de 2 g/kg/jour, 5 jours par semaine pendant 35 jours, avec une période d’observation supplémentaire de 7 jours, n’ont pas entraîné de mortalité ni de signes évidents de toxicité.

•Travail TRAMIL28

Le jus lyophilisé de 500 g de feuille, appliqué avec un patch de gaze stérile sur la peau épilée de 14 lapins albinos mâles Nouvelle Zélandesains (2-3 kg), et sur 16 cobayes blancs Hantleet des deux sexes (450-500 g), à des doses de 0,5 mL et de 0,75 mL, les animaux étant évalués 24 et 72 heures après l’application, a montré un indice d’irritation primaire < 5. L’analyse histopathologique par biopsie n’a pas montré d’irritation cutanée évidente.

•Travail TRAMIL29

L’extrait aqueux de feuille (600 mg/mL), obtenu après avoir passé au mixeur la matière végétale fraîche, a été appliqué localement (1 mL/jour/5 jours) sur une zone de la peau d’un côté des reins de 10 x 5 cm, entaillée au bistouri, de 3 lapins Nouvelle Zélande, suivant le protocole de l’USP27 NF22, OECD404, modification du LEBi. Le contrôle a été réalisé avec de l’eau distillée et désionisée sur l’autre côté des reins des mêmes animaux. On n’a pas enregistré de symptômes ni d’érythèmes pendant l’expérience, ni au cours de la période d’observation de 12 jours qui l’a suivie.

•Travaux TRAMIL30-31

Les extraits aqueux de racine fraîche (13,07 mg/mL) et de graine fraîche (30,5 mg/mL), obtenus après passage au mixeur de la matière végétale fraîche, ont été appliqués localement à raison de 100 µL/jour/5 jours, sur une seule paupière de 3 lapins Nouvelle Zélande, suivant le protocole OECD405, modification du LEBi. Le contrôle a été réalisé avec de l’eau distillée et désionisée sur l’autre paupière du même animal, dans les mêmes conditions. On n’a pas constaté de signes anormaux pendant l’expérience, ni au cours de la période d’observation de 12 jours qui l’a suivie.

L’extrait éthanolique (95%) de feuille séchée, administré par voie intrapéritonéale à la souris à raison de 100 mg/kg, n’a pas montré de toxicité générale23.

L’extrait hydroalcoolique (50%) de feuille séchée administré par voie intrapéritonéale à la souris (1 g/kg) n’a pas montré de toxicité générale24.

La feuille administrée oralement au lapin a eu un effet cardiotoxique32.

La ration alimentaire de 70 porcs, contaminée à des doses variables par la graine, a provoqué une ataxie ainsi que d’autres dysfonctionnements neuromusculaires33.

La gousse fraîche administrée oralement à des porcs a eu une action toxique accompagnée de signes de dégénérescence musculaire, ainsi que de toxicité hépatique et rénale34.

La gousse fraîche administrée oralement pendant 10 jours à des bovins, et représentant 21,5% de leur diète, a provoqué une myopathie dégénérative toxique à phases et à foyers multiples35.

On ne dispose pas d’information garantissant l’innocuité de son emploi sur des enfants, ni sur des femmes enceintes ou allaitantes.

Lafeuille contient des anthraquinones : acide chrysophanique, 1-1´bis-(4,4´,5,5´tétrahydroxy, 2,2´diméthyl) anthraquinone6, émodine, physcion et ses glucosides7, physcion dianthrone8; des flavonoïdes : vitéxine8, matteucinol et jacéidine rhamnosides9; les alcanes présents dans la cire de la feuille ont été étudiés10.

La racine contient des flavonoïdes : quercétine11; des anthraquinones : aloémodine7, chrysacine11, acide chrysophanique12, helminthosporine, islandicine, physcion, xanthorine13, rhéine8; des xanthones : pinséline, 1-7dihydroxy-3-méthyl xanthone12; des stérols : campestérol, ß-sitostérol14, stigmastérol14.

•Travail TRAMIL15

L’extrait aqueux (décoction) lyophilisé de racine fraîche, administré oralement à 10 souris NGP (5 mâles et 5 femelles), à raison d’une dose unique de 2 g/kg, a augmenté le transit intestinal avec une différence significative (p £0,05). Parcours moyen du groupe contrôle = 50,99% ±3,81%. Parcours moyen du groupe traité = 66,24% ±2,53%.

La décoction de feuille séchée, de racine et de graine in vitro (1 mL/plaque), a inhibé Epidermophyton floccosum, Microsporum gypseum, Trichophyton mentagrophytes et T. rubrum16.

L’extrait hydroalcoolique (50%) de feuille in vitro a été actif (CIM = 50 µg/mL) contre Trichophyton rubrum; mais pas contre Aspergillus flavus,Epidermophyton floccosum niMicrosporum gypseum16.

L’extrait hydroalcoolique (50%) de feuille in vitro face à Neisseria gonorrhoea a été inactif à une concentration de 50 µL/disque17.

L’extrait aqueux de racine séchée a eu un effet in vitro contre Candida albicans sur plaque d’agar-agar à une concentration de 6%18.

Les extraits méthanoliques de feuille et de graine séchées (2 mg/mL) ont été inactifs contre Pseudomonas aeruginosa, Streptococcus spp, Staphylococcus aureus, Streptobacillus spp, Salmonella spp, Corynebacterium diphtheriae et Neisseria spp19.

L’extrait éthanolique (95%) de feuille séchée a montré une activité insecticide à une concentration de 50 µg sur Rhodnius neglectus20.

L’extrait éthanolique in vitro sur Plasmodium falciparum a produit une inhibition de 60%. L’extrait dichlorométhanique de feuille (6 mg/mL) in vitro, sur Plasmodium falciparum a montré une activité antiprotozoaire en inhibant sa croissance dans une proportion de 81,7%21.

L’extrait de feuille in vivo suivant la méthode expérimentale d’oedème de patte de rat induit par carragheenine et granulome de coton (1-2 g/kg) a montré une action anti-inflammatoire, mécanisme obtenu après inhibition de la synthèse des prostaglandines22.

L’extrait éthanolique (95%) de feuille séchée administré oralement au rat mâle à raison de 100 mg/kg/5 jours, a montré une action antihépatotoxique23.

L’extrait hydroalcoolique (50%) de feuille séchée, administré oralement au rat à raison de 500 mg/kg, a eu une action antihépatotoxique24.

L’extrait éthanolique (95%) de feuille et de tige (33 mL/L)a eu un effet relaxant de muscle lisse sur duodénum isolé de lapin, et spasmogène sur iléon isolé de cobaye25.

L’extrait aqueux de feuille et de tige administré par voie intraveineuse au chien (0,1 mL/kg) a montré un effet hypotenseur25.

Références :  

1 GERMOSEN-ROBINEAU L, GERONIMO M, AMPARO C, 1984 Encuesta TRAMIL. enda-caribe, Santo Domingo, Rep. Dominicana.

2 CHARLES C, 1988 TRAMIL survey. Movement for Cultural Awareness MCA, Roseau, Dominica.

3 LAGOS-WITTE S, 1988-89, 1996 Encuesta TRAMIL. Laboratorio de Histología Vegetal y Etnobotánica, Departamento de Biología, Universidad Nacional Autónoma de Honduras UNAH, Tegucigalpa, Honduras.

4 GIRON L, 1988 Encuesta TRAMIL (Costa atlántica). Centro Mesoamericano de Tecnología CEMAT, Guatemala, Guatemala.

5 WENIGER B, ROUZIER M, 1986 Enquête TRAMIL. Service Oecuménique d'Entraide SOE, Port au Prince, Haïti.

6 TIWARI RD, SINGH J, 1977 Anthraquinone pigments from Cassia occidentalis. Planta Med Suppl 32(4):375-377.

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9 TIWARI RD, SINGH J, 1977 Flavonoids from the leaves of Cassia occidentalis. Phytochemistry16(7):1107-1108.

10 MAJUMDAR SG, BASAK B, LASKAR S, 1987 Surface hydrocarbons from the leaves of some Cassia species. J Indian Chem Soc 64(4):259-260.

11 ALVES AC, 1964 Pharmacological study of the root of Cassia occidentalis. An Fac Farm Porto 24:65-119.

12 WADER GR, KUDAV NA, 1987 Chemical investigation ofCassia occidentalis Linn. with special reference to isolation of xanthones fromCassia spp. Indian J of Chemisitry 26(B7):703.

13 KUDAV NA, KULKARNI A, 1974 Chemical investigation on Cassia occidentalis. II. Isolation of islandicin, helminthosporine, xanthonin and NMR spectral studies of cassiollin and its derivatives. Indian J Chem 12:1042-1044.

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20 SCHMEDA-HIRSCHMANN G, ROJAS DE ARIAS A, 1992 A screening method for natural products on triatomine bugs. Phytother Res 6(2):68-73.

21 TONA L, NGIMBI NP, TSAKALA M, MESIA K, CIMANGA K, ASPERS S, DE BRUYNE T, PIETERS L, TOTTE J, VLIETINCK AJ, 1999 Antimalarial activity of 20 crude extracts from nine African medicinal plants used in Kinshasa, Congo. J Ethnopharmacol 68(1/3):193-203.

22 SADIQUE J, CHANDRA T, THENMOZHI V, ELANGO V, 1987 Biochemical modes of action ofCassia occidentalis and Cardiospermum halicacabum in inflammation. J Ethnopharmacol 19(2):201-212.

23 SARAF S, DIXIT VK, TRIPATHI SC, PATNAIK GK, 1994 Antihepatotoxic activity of Cassia occidentalis. Int J Pharmacog 32(2):178-183.

24 JAFRI MA, JALIS SUBHANI M, JAVED K, SINGH S, 1999 Hepatoprotective activity of leaves of Cassia occidentalis against paracetamol and ethyl alcohol intoxication in rats. J Ethnopharmacol 66(3):355-361.

25 FENG PC, HAYNES LJ, MAGNUS KE, PLIMMER JR, SHERRAT HS, 1962 Pharmacological screening of some West Indian medicinal plants. J Pharm Pharmacol 14:556-561.

26 Garcia GM, Coto MT, Gonzalez CS, Pazos L, 1998 Toxicidad sub-crónica en ratones, del extracto acuoso de hojas frescas de Senna occidentalis. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos, Escuela de Medicina, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

27 Garcia GM, Coto MT, Gonzalez CS, Pazos L, 1998 Toxicidad sub-crónica en ratones, del extracto acuoso de raíz frescas de Senna occidentalis. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos, Escuela de Medicina, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

28 GONZALEZ A, ALFONSO H, 1990 Evaluación de la toxicidad dérmica deMomordica charantia L. yCassia occidentalis L. en conejo y cobayo. Informe TRAMIL. Centro Nacional de Salud Animal, La Habana, Cuba.

29 PAZOS L, COTO T, GONZALEZ S, 2003 Estudio de irritabilidad dérmica, en piel lesionada de conejo, de hoja fresca de Senna occidentalis. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

30 PAZOS L, COTO T, GONZALEZ S, 2003 Irritabilidad de la mucosa en conejo, de raíz fresca de Senna occidentalis. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

31 PAZOS L, COTO T, GONZALEZ S, 2003 Irritabilidad de la mucosa en conejo, de semillas frescas de Senna occidentalis. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

32 O'HARA P, PIERCE K, 1974 A toxic cardiomyopathy caused byCassia occidentalis. II Biochemical studies in poisoned rabbits. Vet Pathol 11(2):110-124.

33 COLVIN BM, HARRISON LR, SANGSTER LT, GOSSER HS, 1986 Cassia occidentalis toxicosis in growing pigs. J Am Vet Med Assoc 189(4):423-426.

34 MARTINS E, MARTINS VM, RIET-CORREA F, SONCINI RA, PARABONI SV, 1986 Intoxicação por Cassia occidentalis (Leguminosae) em suínos. Pesq Vet Bras 6(2):35-38.

35BARTH AT, KOMMERS GO, SALLES MS, WOUTERS F, DE BARROS CS, 1994 Coffee senna (Senna occidentalis) poisoning in cattle in Brazil. Vet Hum Toxicol 36(6):541-545.

36 ALBORNOZ A, 1993 Medicina Tradicional Herbaria. Caracas, Venezuela: Editorial Instituto Farmacoterápico Latino S.A. p174.

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