Senna occidentalis

nombre científico: 
Senna occidentalis (L.) Link
Familia botánica: 

Descripción botánica

Herbácea de hasta 2 m de altura, finamente estrigulosa. Hojas alternas, pinnadas, arregladas espiralmente; folíolos en 3 a 6 pares, ovados a lanceolados, agudos a acuminados; pecíolo con glándula en la base, sésil, globosa o cónica; estípulas linear-lanceoladas a triangular, acuminadas, caducas. Racimos axilares con flores amarillas; sépalos oblongos, obtusos; pétalos ovados o elípticos. Vaina linear, obtusa, mucronata, erecta, más o menos arqueada, con numerosas semillas ovoides.

Voucher(s)

Jiménez,29&116,JBSD

Lagos-Witte,16,HPMHV

Girón,249,CFEH

Rouzier,225,SOE

fiebre:

hoja y raíz, decocción, aplicación local en cataplasma3

dolor de cabeza:

hoja, cataplasma, aplicación sobre la frente2

fiebre:

hoja, decocción, vía oral1

ictericia:

hoja, decocción, vía oral2

dolor de cuerpo:

hoja, decocción, vía oral3

afecciones cutáneas:

hoja, estrujada, aplicación local1

dolor de estómago:

hoja, infusión, vía oral4

mala calidad de la sangre:

hoja, zumo, fricción de la piel1

dolor de estómago:

raíz y hoja machacada, decocción, vía oral3

dolor de garganta:

raíz y hoja, chupadas5

llaga, herida:

semilla, machacada, aplicación local en cataplasma4

tiña:

semilla, machacada, aplicación local en cataplasma4

dolor de cuerpo:

semilla, machacada, baños3

Para afecciones cutáneas:

Limpiar la lesión con agua hervida y jabón. Lavar adecuadamente 30–50 gramos de hoja (15-20 folíolos), machacar y aplicar localmente en cantidad suficiente para cubrir el área afectada. Cubrir con un apósito o paño limpio y cambiar 3-4 veces al día.

Para dolor de estómago:

Preparar una decocción con 15 gramos de hoja (7-10 folíolos) y 15 gramos de raíz en 1 litro (4 tazas) de agua, hervir por un mínimo de 10 minutos en recipiente tapado. Filtrar, enfriar y beber 1 taza 3 veces al día36.

Para dolor de cabeza, fiebre, ictericia,dolor de garganta y dolor de cuerpo:

No se dispone de información para establecer una forma de preparación y dosificación más que la referida por el uso tradicional.

Ninguna preparación debe guardarse por más de 24 horas, ni fuera de refrigeración.

El uso contra mala calidad de la sangreconstituye parte integral del acervo cultural de nuestras comunidades y no se clasifica en las categorías definidas por TRAMIL.

De acuerdo con la información disponible:

El uso de hoja para afecciones cutáneas, dolor de cabeza, dolor de cuerpo, dolor de garganta, fiebre e ictericia, así como el uso de semilla para llaga y tiñase clasifica como REC con base en el empleo significativo tradicional documentado en las encuestas TRAMIL, los estudios de toxicidad y la información científica publicada.

Toda aplicación tópica debe seguir estrictas medidas higiénicas que impidan la contaminación o infección sobreañadida.

El uso de hoja para dolor de estómago, de semilla para dolor de cuerpo y de raíz para dolor de estómago,dolor de gargantay fiebre se clasifica como REC con base en el empleo significativo tradicional documentado en las encuestas TRAMIL y los estudios de toxicidad.

En caso de que se observe un deterioro del paciente, la fiebre persista por más de 2 días, la ictericia, el dolor de estómago o de garganta por más de 3 días o la afección cutánea 5 días, debe buscar atención médica.

Por el riesgo de la ictericia para la salud, se recomienda una valoración médica inicial. El uso de este recurso debe ser considerado como complementario al tratamiento médico, salvo contraindicación.

No usar durante el embarazo, la lactancia ni en niños menores de 3 años.

Trabajos TRAMIL26-27

Los extractos acuosos (decocción) de hoja y de raíz frescas liofilizados, vía oral en 10 ratones NGP (5 machos y 5 hembras), a dosis de 2 g/kg/día, por 5 días por semana durante 35 días, y un período de observación adicional de 7 días, no presentaron mortalidad ni signos evidentes de toxicidad.

Trabajo TRAMIL28

El zumo liofilizado de 500 g de hoja, en piel depilada de 14 conejos albinos machos New Zealandsanos (2-3 kg) y en 16 cobayos blancos Hartley de ambos sexos (450-500 g), con dosis de 0.5 mL y 0.75 mL con parche de gasa estéril, evaluados a 24 y 72 horas después de la aplicación, mostró un índice de irritación primaria < 5; el análisis histopatológico mediante biopsia no mostró evidencia de irritación cutánea.

Trabajo TRAMIL29

El extracto acuoso de hoja (600 mg/mL) obtenido por licuado de material fresco, se administró por vía tópica (1 mL/día/5 días) en un área de la piel del lomo de 10 x 5 cm, lesionada con cortes de bisturí, a 3 conejos New Zealand, según protocolo de la USP27 NF22, OECD404, modificación del LEBi. El control se realizó con agua destilada y desionizada al mismo conejo en el lado contralateral. Tuvieron un período de observación de 12 días. No se presentaron síntomas ni eritema o edema durante el ensayo ni en la observación posterior.

Trabajos TRAMIL30-31

Los extractos acuosos de raíz fresca (13.07 mg/mL) y de semilla fresca (30.5 mg/mL), obtenidos por licuado de material fresco, se administraron por separado, por vía tópica 100 µL/día/5 días en el párpado del ojo, a 3 conejos New Zealand, según protocolo OECD405, modificación del LEBi. El control se realizó con agua destilada y desionizada al mismo conejo en el otro ojo, en las mismas condiciones. Tuvieron un período de observación del párpado de 12 días. No se presentaron síntomas anormales durante el ensayo ni en la observación posterior.

El extracto etanólico (95%) de hoja seca no mostró toxicidad general vía intraperitoneal en ratón (100 mg/kg)23.

El extracto hidroalcohólico (50%) de hoja seca por vía intraperitoneal en ratón (1 g/kg) no mostró toxicidad general24.

La hoja por vía oral en conejo mostró actividad cardiotóxica32.

La ración alimentaria de 70 cerdos, contaminada a dosis variable por la semilla, provocó ataxia y otros disfuncionamientos neuromusculares33.

La vaina fresca vía oral en cerdos mostró actividad tóxica con signos de degeneración muscular, toxicidad hepática y renal34.

La vaina fresca vía oral a 21.5% de la dieta durante 10 días en ganado vacuno provocó miopatía degenerativa tóxica multifásica y multifoca35.

No se dispone de información que documente la seguridad de su uso en niños, durante el embarazo o la lactancia.

Lahoja contiene antraquinonas : ácido crisofánico, 1-1´bis-(4,4´,5,5´tetrahidroxi, 2,2´dimetil) antraquinona6, emodina, fisción y sus glicósidos7, fisción diantrona8; flavonoides : vitexina8, matteucinol y jaceidin ramnósidos9; los alcanos presentes en la cera de la hoja se han estudiado10.

La raíz contiene flavonoides : quercetina11; antraquinonas: aloemodina7, crisazina11, ácido crisofánico12, helmintosporina, islandicina, fisción, xantorina13, rheína8;xantonas : pinselina, 1-7dihidroxi-3-metil xantona12; esteroles : campesterol, ß-sitosterol14, estigmasterol13.

Trabajo TRAMIL15

El extracto acuoso (decocción) liofilizado, de raíz fresca, vía oral en 10 ratones NGP (5 machos y 5 hembras), dosis única de 2 g/kg, aumentó el tránsito intestinal con una diferencia significativa (p £0.05). Recorrido promedio grupo control = 50.99% ±3.81%. Recorrido promedio grupo tratamiento = 66.24% ±2.53%.

La decocción de hoja seca, raíz y semilla in vitro (1 mL/placa), inhibió Epidermophyton floccosum, Microsporum gypseum, Trichophyton mentagrophytes y T. rubrum16.

El extracto hidroalcohólico (50%) de hojain vitro contra Trichophyton rubrum fue activo (CIM = 50 µg/mL); pero no contra Aspergillus flavus,Epidermophyton floccosum niMicrosporum gypseum16.

El extracto hidroalcohólico (50%) de hoja in vitro frente a Neisseria gonorrhoea fue inactivo a concentración de 50 µL/disco17.

El extracto acuoso de raíz seca mostró efecto in vitro contra Candida albicans en placa de agar a concentración de 6%18.

Los extractos metanólicos de hoja y de semilla secas (2 mg/mL) fueron inactivos contra Pseudomonas aeruginosa, Streptococcus spp, Staphylococcus aureus, Streptobacillus spp, Salmonella spp, Corynebacterium diphtheriae yNeisseria spp19.

El extracto etanólico (95%) de hoja seca demostró actividad insecticida a concentración de 50 µg frente a Rhodnius neglectus20.

El extracto etanólico in vitro sobre Plasmodium falciparum produjo una inhibición del 60%. El extracto diclorometánico de hoja (6 mg/mL) in vitro, sobre Plasmodium falciparum mostró actividad antiprotozoaria al inhibir el crecimiento en un 81.7%21.

El extracto de hoja in vivo con el método experimental de edema de la pata de rata inducido por carragenina y granuloma de algodón (1-2 g/kg) presentó efecto antiinflamatorio, mecanismo mediado por la inhibición de la síntesis de las prostaglandinas22.

El extracto etanólico (95%) de hoja seca mostró actividad antihepatotóxica vía oral en rata macho (100 mg/kg/5 días)23.

El extracto hidroalcohólico (50%) de hoja seca mostró actividad antihepatotóxica vía oral en rata (500 mg/kg)24.

El extracto etanólico (95%) de hoja y tallo (33 mL/L)mostró efecto relajante de músculo liso sobre duodeno aislado de conejo y espasmogénico sobre íleon aislado de cobayo25.

El extracto acuoso de hoja y tallo por vía intravenosa en perro (0.1 mL/kg) mostró efecto hipotensor25.

Referencias:  

1 GERMOSEN-ROBINEAU L, GERONIMO M, AMPARO C, 1984 Encuesta TRAMIL. enda-caribe, Santo Domingo, Rep. Dominicana.

2 CHARLES C, 1988 TRAMIL survey. Movement for Cultural Awareness MCA, Roseau, Dominica.

3 LAGOS-WITTE S, 1988-89, 1996 Encuesta TRAMIL. Laboratorio de Histología Vegetal y Etnobotánica, Departamento de Biología, Universidad Nacional Autónoma de Honduras UNAH, Tegucigalpa, Honduras.

4 GIRON L, 1988 Encuesta TRAMIL (Costa atlántica). Centro Mesoamericano de Tecnología CEMAT, Guatemala, Guatemala.

5 WENIGER B, ROUZIER M, 1986 Enquête TRAMIL. Service Oecuménique d'Entraide SOE, Port au Prince, Haïti.

6 TIWARI RD, SINGH J, 1977 Anthraquinone pigments from Cassia occidentalis. Planta Med Suppl 32(4):375-377.

7 RAI PP, SHOK M, 1983 Anthraquinone glycosides from plant parts of Cassia occidentalis. Indian J Pharm Sci 45(2):87-88.

8 ANTON R, DUQUENOIS P, 1968 Contribution à l'étude chimique duCassia occidentalis L. Annales Pharmaceutiques Françaises 26(2):673-680.

9 TIWARI RD, SINGH J, 1977 Flavonoids from the leaves of Cassia occidentalis. Phytochemistry16(7):1107-1108.

10 MAJUMDAR SG, BASAK B, LASKAR S, 1987 Surface hydrocarbons from the leaves of some Cassia species. J Indian Chem Soc 64(4):259-260.

11 ALVES AC, 1964 Pharmacological study of the root of Cassia occidentalis. An Fac Farm Porto 24:65-119.

12 WADER GR, KUDAV NA, 1987 Chemical investigation ofCassia occidentalis Linn. with special reference to isolation of xanthones fromCassia spp. Indian J of Chemisitry 26(B7):703.

13 KUDAV NA, KULKARNI A, 1974 Chemical investigation on Cassia occidentalis. II. Isolation of islandicin, helminthosporine, xanthonin and NMR spectral studies of cassiollin and its derivatives. Indian J Chem 12:1042-1044.

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20 SCHMEDA-HIRSCHMANN G, ROJAS DE ARIAS A, 1992 A screening method for natural products on triatomine bugs. Phytother Res 6(2):68-73.

21 TONA L, NGIMBI NP, TSAKALA M, MESIA K, CIMANGA K, ASPERS S, DE BRUYNE T, PIETERS L, TOTTE J, VLIETINCK AJ, 1999 Antimalarial activity of 20 crude extracts from nine African medicinal plants used in Kinshasa, Congo. J Ethnopharmacol 68(1/3):193-203.

22 SADIQUE J, CHANDRA T, THENMOZHI V, ELANGO V, 1987 Biochemical modes of action ofCassia occidentalis and Cardiospermum halicacabum in inflammation. J Ethnopharmacol 19(2):201-212.

23 SARAF S, DIXIT VK, TRIPATHI SC, PATNAIK GK, 1994 Antihepatotoxic activity of Cassia occidentalis. Int J Pharmacog 32(2):178-183.

24 JAFRI MA, JALIS SUBHANI M, JAVED K, SINGH S, 1999 Hepatoprotective activity of leaves of Cassia occidentalis against paracetamol and ethyl alcohol intoxication in rats. J Ethnopharmacol 66(3):355-361.

25 FENG PC, HAYNES LJ, MAGNUS KE, PLIMMER JR, SHERRAT HS, 1962 Pharmacological screening of some West Indian medicinal plants. J Pharm Pharmacol 14:556-561.

26 Garcia GM, Coto MT, Gonzalez CS, Pazos L, 1998 Toxicidad sub-crónica en ratones, del extracto acuoso de hojas frescas de Senna occidentalis. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos, Escuela de Medicina, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

27 Garcia GM, Coto MT, Gonzalez CS, Pazos L, 1998 Toxicidad sub-crónica en ratones, del extracto acuoso de raíz frescas de Senna occidentalis. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos, Escuela de Medicina, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

28 GONZALEZ A, ALFONSO H, 1990 Evaluación de la toxicidad dérmica deMomordica charantia L. yCassia occidentalis L. en conejo y cobayo. Informe TRAMIL. Centro Nacional de Salud Animal, La Habana, Cuba.

29 PAZOS L, COTO T, GONZALEZ S, 2003 Estudio de irritabilidad dérmica, en piel lesionada de conejo, de hoja fresca de Senna occidentalis. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

30 PAZOS L, COTO T, GONZALEZ S, 2003 Irritabilidad de la mucosa en conejo, de raíz fresca de Senna occidentalis. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

31 PAZOS L, COTO T, GONZALEZ S, 2003 Irritabilidad de la mucosa en conejo, de semillas frescas de Senna occidentalis. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

32 O'HARA P, PIERCE K, 1974 A toxic cardiomyopathy caused byCassia occidentalis. II Biochemical studies in poisoned rabbits. Vet Pathol 11(2):110-124.

33 COLVIN BM, HARRISON LR, SANGSTER LT, GOSSER HS, 1986 Cassia occidentalis toxicosis in growing pigs. J Am Vet Med Assoc 189(4):423-426.

34 MARTINS E, MARTINS VM, RIET-CORREA F, SONCINI RA, PARABONI SV, 1986 Intoxicação por Cassia occidentalis (Leguminosae) em suínos. Pesq Vet Bras 6(2):35-38.

35BARTH AT, KOMMERS GO, SALLES MS, WOUTERS F, DE BARROS CS, 1994 Coffee senna (Senna occidentalis) poisoning in cattle in Brazil. Vet Hum Toxicol 36(6):541-545.

36 ALBORNOZ A, 1993 Medicina Tradicional Herbaria. Caracas, Venezuela: Editorial Instituto Farmacoterápico Latino S.A. p174.

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