Manihot esculenta

nombre científico: 
Manihot esculenta Crantz
Familia botánica: 

Descripción botánica

Hierba o subfrútice de 1 a 3 m, con raíces tuberosas grandes. Hojas alternas, glabras, palmadas de 3 a 7 lóbulos, lineares a elípticos u oblanceolados, acuminados, glaucos en el envés. Inflorescencias en panículas terminales; flores con cáliz campanulado, 5 lobado. Cápsula dehiscente de 1.5 cm, subglobosa, rugosa, ligeramente alada.

Voucher(s)

Rouzier,63,SOE

Jiménez,1523,JBSD

dolor de cabeza:

hoja, machacada, en aplicación local1

hongos (micosis interdigital):

  hoja, machacada, en cataplasma2

El tubérculo cocinado de Manihot esculenta constituye un alimento de consumo humano relativamente extendido.

Para hongos (micosis interdigital) y dolor de cabeza:

Lavar adecuadamente la hoja, machacar, tomar 5-10 gramos del material vegetal y aplicar sobre la piel de la zona afectada 2 veces al día.

De acuerdo con la información disponible:

El uso para dolor de cabeza y para micosis interdigital se clasifica como REC con base en la experiencia tradicional en el uso (OMS/WHO)3documentado por su empleo significativo en las encuestas TRAMIL.

La aplicación tópica, para hongos (micosis interdigital), debe seguir estrictas medidas higiénicas para impedir la contaminación o la infección sobreañadida.

La hoja puede producir reacciones de hipersensibilidad.

Manihot esculentano debe ser consumida por personas con trastornos tiroideos4.

Trabajo TRAMIL20

El tubérculo fresco rayado, se aplicadó tópicamente en parche sobre la piel (0,6 g de material vegetal, en un área de aproximadamente 6 cm2), en conejo macho Nueva Zelanda. A las 4 horas se retiró el parche y se hicieron observaciones para las lecturas de eritema y edema a las 24, 48 y 72 horas, no evidenciándose ningún signo clínico, por lo que se encuentra en la categoría no irritante.

Trabajo TRAMIL21 El zumo liofilizado de hoja fresca machacada, concentración de 500 mg/mL de agua, vía tópica 4 horas diariamente durante 5 días consecutivos a 3 conejos New Zealand, 0.5 mL en un cuadrante de 5 cm2 con pelo cortado del lomo, control contralateral con agua, protocolo EPA870.2500, no provocó edema ni eritema durante el ensayo ni en los 11 días adicionales de observación.

El consumo de planta entera en estado fresco es tóxico para el ser humano17.

La cocción permite destruir la enzima b-glucosidasa encargada de hidrolizar los glucósidos cianogénéticos en ácido cianhídrico18.

La decocción de hoja fresca administrada oralmente en dosis variable no mostró toxicidad general en humano adulto19.

No se dispone de información que documente la seguridad de su uso medicinal en niños, durante el embarazo o la lactancia.

La hoja contiene ácido cianhídrico (0.1-0.21 mg/g)5; ácidos orgánicos: oxálico6, flavonoides: amentoflavona, podocarpus-flavona7, derivados de quercetina8.

La raíz ha sido ampliamente estudiada y contiene, entre otros componentes, diterpenos9, cumarinas, ácidos orgánicos10, glicósidos cianogénicos: linamarina9-11.

Análisis proximal de 100 g de hoja12: calorías: 60; agua: 81 g; proteínas: 6.9g; grasas: 1.3 g; carbohidratos: 9.2 g; fibras: 2.1 g; cenizas: 1.6 g; calcio: 144 mg; fósforo: 68 mg; hierro: 2.8 mg; sodio: 4 mg; potasio: 409 mg; ß-caroteno: 8280 µg; tiamina: 0.16 mg; riboflavina: 0.32 mg; niacina: 1.80 mg; ácido ascórbico: 82 mg.

Trabajo TRAMIL13

El zumo de hoja fresca (2 mg/mL) no presentó actividad contra Bacillus subtilis ATCC6051, Staphyloccocus aureus, Candida albicans, Cryptococcusneoformans, Mycobacterium smegmatis ATCC607, Trichophyton rubrum, Microsporum gypseum ni Aspergillus flavus.

El extracto acuoso de partes aéreas secas fue activo contra Microsporum canis e inactivo contra M. fulvum, M. gypseum y Trichophyton gallinae14.

El extracto de acetato de etilo de partes aéreas secas (< 0.13 mg/mL) fue fungicida contra Microsporum canis, M. fulvum, M gypseum y Trichophyton gallinae14. Ambos extractos (1 mg/disco) fueron inactivos contra Candida albicans y Saccharomyces cerevisiae14.

El extracto etanólico de hoja inhibió in vitro, cepas de Staphylococcus aureus (1mg/mL), de los hongosMicrosporum canis, M. fulvum, M. gypseum y Trichophyton gallinae (0.13 mg/mL) y delSindbisvirus (5.2 µg/mL)14.

El extracto acuoso (0.18 µg/mL) fue activo in vitro frente aCitomegalovirus14.

La hoja fresca inhibió la síntesis de proteínas in vitro, con una concentración inhibitoria media IC50 = 0.75 µg/mL15.

El extracto acuoso de raíz seca (100 mg/kg) mostró actividad antitumoral en ratón16.

Referencias:  

1 WENIGER B, ROUZIER M, 1986 Enquête TRAMIL. Service Oecuménique d'Entraide SOE, Port au Prince, Haïti.

2 LONGUEFOSSE JL, NOSSIN E, 1990-95 Enquête TRAMIL. Association pour la valorisation des plantes médicinales de la Caraïbe AVPMC, Fort de France, Martinique.

3 WHO, 1991 Guidelines for the assessment of herbal medicines. WHO/TRM/91.4. Programme on Traditional Medicines, WHO, Geneva, Switzerland.

4 LINDNER E, 1995 Toxicología de los alimentos. 4ª ed. Madrid, España: Editorial Acribia S.A. p688.

5 ROSA DE BATTISTI C, TELES F, COELHO D, JOSE DA SILVEIRA A, BATISTA C, 1981 Determination of hydrogen cyanide toxicity and total soluble carbohydrates in cassava (Manihot esculenta Crantz). Rev Ceres 28:521-525.

6 VALYASEVI A, DHANAMITTA S, 1974 Studies of bladder stone disease in Thailand. XVII. Effect of exogenous sources of oxalate on crystalluria. Amer J Clin Nutr 27(8):877-882.

7 KAMIL M, ILYAS M, RAHMAN W, OKIGAWA M, KAWANO N, 1994 Biflavones from Manihot utilissima. Phytochemistry 13(11):2619-2620.

8 SUBRAMANIAN S, NAGARAJAN S, SULOCHANA N, 1971 Flavonoids of some Euphorbiaceous plants. Phytochemistry 10:2548-2549.

9 SAKAI T, NAKAGAWA Y, 1988 Diterpenic stress metabolites from cassava roots. Phytochemistry 27(12):3769-3779.

10 LA LAGUNA F, 1993 Purification of fresh cassava root polyphenols by solid-phase extraction with Amberlite xad-8 resin. J Chromatogr A 657(2):445-449.

11 LYKKESFELDT J, MOLLER BL, 1994 Cyanogenic glucosides in cassava, Manihot esculenta Crantz. Acta Chem Scand 48(2):178-180.

12 DUKE JA, ATCHLEY AA, 1986 Handbook of proximate analysis tables of higher plants. Boca Raton, USA: CRC Press.

13 CACERES A, 2000 Actividad antibiótica in vitro del zumo de hoja fresca deManihot esculenta. Informe TRAMIL. Facultad de Ciencias Químicas y Farmacia, Universidad de San Carlos USAC, Guatemala, Guatemala.

14 MACRAE WD, HUDSON JB, TOWERS GH, 1988 Studies on the pharmacological activity of Amazonian Euphorbiaceae. J Ethnopharmacol 22(2):143-172.

15 GASPERI-CAMPANI A, BARBIERI L, BATTELLI MG, STIRPE F, 1985 On the distribution of ribosome-inactivating proteins amongst plants. J Nat Prod 48(3):446-454.

16 ITOKAWA H, HIRAYAMA F, TSURUOKA S, MIZUNO K, TAKEYA K, NITTA A, 1990 Screening test for antitumor activity of crude drugs (III). Studies on antitumor activity of Indonesian medicinal plants. Shoyakugaku Zasshi 44(1):58-62.

17 FERNANDO R, 1988 Plant poisoning in Sri Lanka. Toxicon 26(1):20.

18 ALONSO J, 1998 Tratado de fitomedicina. Bases clínicas y farmacológicas. Buenos Aires, Argentina: ISIS ediciones SRL. p687.

19 MADUAGWU EN, UMOH IB, 1982 Detoxification of cassava leaves by simple traditional methods. Toxicol Lett 10(2-3):245-248.

20 LOPEZ M, MARTINEZ MJ, MOREJON Z, BOUCOURT E, FUENTES V, MORON F. 2005 Irritabilidad dérmica primaria de tubérculo fresco rayado de Manihot esculenta Crantz. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Medicina “Dr. Salvador Allende”, Cerro, C. Habana, Cuba.

21 PAZOS L, COTO T, GONZALEZ S, 2006 Irritabilidad dérmica, piel sana en conejos, de hoja machacada de Manihot esculenta. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos, LEBi, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

FORMAL DESCARGO

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