Morinda citrifolia

nombre científico: 
Morinda citrifolia L.
Familia botánica: 

Descripción botánica

Árbol o arbusto de hasta 6 m de alto. Hojas opuestas, elípticas, de 10 a 30 cm, agudas o corto acuminadas, cuneadas o redondeadas en la base. Flores blancas, en cabezuelas axilares, pedunculadas; tubo de la corola de hasta 1 cm. Fruto cilíndrico-elipsoide o globoso, amarillo de 5 a 7 cm, con olor fétido al madurar.

Voucher(s)

García,2594,JBSD

Martínez,4741,ROIG

Soto,51364,CR

reumatismo:

hoja fresca, natural, aplicación local1

Los frutos y hojas de Morinda citrifolia constituyen un alimento de consumo humano relativamente extendido.

Para reumatismo:

No se dispone de información para establecer una forma de preparación y dosificación más que la referida por el uso tradicional.

De acuerdo con la información disponible:

El uso para reumatismo se clasifica como REC con base en la experiencia tradicional en el uso (OMS/WHO)2 documentado por su empleo significativo en las encuestas TRAMIL.

El uso de este recurso en caso de reumatismo debe ser considerado como complementario al tratamiento médico.

Trabajo TRAMIL20

La hoja fresca machacada, aplicada tópicamente en parche sobre la piel (0,6 g de material vegetal, en un área de aproximadamente 6 cm2), en conejo macho Nueva Zelanda. A las 4 horas se retiró el parche y se hicieron observaciones para las lecturas de eritema y edema a las 24, 48 y 72 horas, no evidenciándose ningún signo clínico, por lo que se encuentra en la categoría no irritante.

Trabajo TRAMIL21 El licuado liofilizado, de hoja fresca machacada, concentración de 500 mg/mL de agua, vía tópica 4 horas diariamente durante 5 días consecutivos a 3 conejos New Zealand, 0.5 mL en un cuadrante de 5 cm2 con pelo cortado del lomo, control contralateral con agua, protocolo EPA870.2500, no provocó edema ni eritema durante el ensayo ni en los 11 días adicionales de observación.

Trabajo TRAMIL22

El extracto acuoso liofilizado, obtenido por decocción de hoja fresca, se administró por vía oral (3 g/kg), diariamente por 5 días consecutivos a 10 ratones Swiss (5 machos con peso promedio de 21.04 ±0.32 gy 5 hembras con peso promedio de 20.54 ±0.22 g) El control se realizó con agua destilada (0.3 mL) a otros 10 ratones de la misma cepa y características. Tuvieron un período de observación de 7 días más al terminar la administración del tratamiento y el control. Durante el ensayo, no se presentó mortalidad ni signos de toxicidad en los parámetros evaluados. La autopsia macroscópica no evidenció alteraciones internas

El extracto hidrometanólico (50%) de hoja por vía intraperitoneal a ratón macho mostró una DL50 mayor de 1 g/kg17.

El extracto hidroalcohólico (50%) de partes aéreas por vía intraperitoneal a ratón mostró una DL50 = 0.75 g/kg10.

Un extracto hidroalcohólico 50% de fruto seco, administrado en dosis de 10 g de material vegetal seco/kg, por vía oral o subcutánea, no causó toxicidad general en ratones18.

No se dispone de información que documente la seguridad de su uso en niños, durante el embarazo o la lactancia.

La planta fresca contiene antraquinonas, principalmente morindona y alizarina3-4.

La hoja contiene monoterpenos: asperulósido y monotropeína4; benzenoides: ácido gentísico; esteroides: ß-sitosterol ; triterpeno: ácido ursólico5-6.

Análisis proximal de 100 g de hoja23: calorías: 107; agua: 77.6%; proteínas: 4.5%; grasas: 7.8%; carbohidratos: 8.6%; fibras: 4%; cenizas: 1.5%; calcio: 36 mg; fósforo: 15 mg; hierro: 2.3 mg; caroteno: 36265 µg; tiamina: 0.16 mg; riboflavina: 0.09 mg; niacina: 7.20 mg; ácido ascórbico: 52 mg.

Trabajo TRAMIL7

El jugo de fruto maduro (50% en agua peso en volumen), administrado en dosis de 20 g de material vegetal fresco/kg, por vía oral, no tuvo efecto analgésico en el modelo de contorsiones inducidas por ácido acético 0.75% (0.1 mL/10 g, intraperitoneal) en ratones OF-1.

Trabajo TRAMIL19

La decocción de hoja fresca no mostró actividad antimicrobiana in vitro a una concentración de 1000 µg/mL contra Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa, Candida albicans, Klebsiella pneumoniae, Mycobacterium smegmatis, Salmonella gallinarum ni Escherichia coli.

Trabajo TRAMIL24

El extracto acuoso (1600 g de material vegetal licuado con 2500 mL de agua destilada y colado, rendimiento = 4.99%) liofilizado de hoja fresca, por vía tópica (0.5, 2, 4, 8 y 16 mg/ambas caras de la oreja derecha, todas en un volumen de 10 µL), en ratón Hsd:ICR (CD-1), grupos de 6 hembras y 6 machos, modelo de inflamación inducida por aplicación de acetato de tetradecanoiforbol (TPA) (0.125 mg/mL) durante 4 horas, el control negativo recibió acetona (10 µL/oreja) y el grupo control positivo fue tratado con indometacina (25 mg/mL). No se observó inhibición de la inflamación estadísticamente significativa en los grupos tratados con el extracto en ninguna de las dosis usadas.

Trabajo TRAMIL25

La decocción 30% de hoja fresca, vía tópica (10 μL en cada cara de ambas orejas); modelo de edema de la oreja inducido por aceite de Croton (10 μL/2.5 mL acetona), dosis 10 μL/cada cara de la oreja derecha; en la oreja izquierda se aplicó 10 μL de acetona de igual manera, a ratón macho OF-1 (6 animales/grupo), el grupo control positivo recibió dexametasona (5 mg/mL acetona), dosis 0,05 mg/cada cara de ambas orejas; el grupo control negativo recibió aceite de Croton en la oreja derecha y acetona en la oreja izquierda en iguales condiciones; tratamientos aplicados 1 min después del aceite de Croton. La decocción inhibió 45.0% y la dexametasona 87.83% la respuesta inflamatoria.

El extracto metanólico de fruto y de rama in vitro (200 µg/mL) en la transcriptasa reversa del HIV-1 indujo un 5% de inhibición8.

El extracto etanólico de fruto pulverizado y hoja, todos en concentración de 3.4 mg/mL, inhibieron respectivamente en 72 y 54%, la ciclooxigenasa-1 (COX-1) in vitro. Los extractos de jugo fresco de fruto y corteza sólo disminuyeron la actividad de esa enzima un 38 y 27%. La aspirina (0.3 mg/mL) y la indometacina (10 µg/mL) causaron una inhibición de 30 y 70% en iguales condiciones experimentales9.

El extracto hidroalcohólico (1:1) de partes aéreas, in vitro (25 µg/mL), no mostró actividad como antibacteriano en Escherichia coli, Salmonella typhi, Agrobacterium tumefaciens, ni antifúngico en Trichophyton mentagrophytes, Aspergillus niger, Microsporum canis, ni antilevaduras en Candida albicans, Cryptococcus neoformans10.

Los extractos clorofórmico, hexánico y metanólico de hoja desecada en frío, aplicados respectivamente en dosis de 2 mg/placa, 1mg/placa y 1 mg/placa, tuvieron actividad antimutagénica, contra mutágenos indirectos, en el modelo in vitro de Salmonella typhimurium TA100. Sin embargo, no tuvieron efecto contra mutágenos directos en dosis hasta 10 mg/placa11.

El extracto alcohólico de hoja tierna, in vitro, frente a Ascaris lumbricoides humano, mostró mayor actividad que el extracto alcohólico de bulbo de Allium sativum12.

El extracto hidroalcohólico (50%) de partes aéreas por vía oral a rata (0.375 mg/kg)no mostró actividad antiinflamatoriae in vitro, no mostró actividad antiespasmódica sobre íleon de cobayo10.

En la hoja se identificó 1 glucósido iridoide y 5 glucósidos flavonoles. El irinoide existe como mezcla epimérica en solución. Todos estos compuestos tuvieron actividad secuestradora de radicales libres, efecto antioxidante in vitro, en concentraciones de 30 micromoles/L13.

El extracto hidroalcohólico (50%) de partes aéreas por vía intraperitoneal a ratón (0.375 mg/kg),no mostró actividad analgésica, anticonvulsiva ni hipotérmica. El mismo extracto por vía oral a rata (250 mg/kg)no mostró actividad hipoglucemiante, ni fue diurético por vía intraperitoneal a rata (0.185 mg/kg)10.

El extracto acuoso de raíz decorticada, por vía intraperitoneal a ratón (800 mg/kg), fue analgésico y tranquilizante a dosis de 1.6 g/kg14.

Al ácido gentísico se le atribuye efecto antirreumático, antiartrítico15; analgésico y antiinflamatorio16.

Referencias:  

1 WENIGER B, ROUZIER M, 1986 Enquête TRAMIL. Service Oecuménique d'Entraide SOE, Port au Prince, Haïti.

2 WHO, 1991 Guidelines for the assessment of herbal medicines. WHO/TRM/91.4. Programme on Traditional Medicines, WHO, Geneva, Switzerland.

3 LEISTNER E, 1973 Biosynthesis of morindone and alizarin in intact plants and cell suspension cultures of Morinda citrifolia. Phytochemistry 12:1669-1674.

4 INOUYE H, TAKEDA Y, NISHIMURA H, KANOMI A, OKUDA T, PUFF C, 1988 Chemotaxonomic studies of Rubiaceous plants containing iridoid glycosides. Phytochemistry27(8):2591-2598.

5 GRIFFITHS LA, 1959 On the distribution of gentisic acid in green plants. J Exp Biol 10(3):437-442.

6 AHMAD VU, BANO S, 1980 Isolation of ß-sitosterol and ursolic acid fromMorinda citrifolia L. J Chem Soc Pak 2(2):71.

7 MORON F, VICTORIA MC, PINEDO Z, 2004 Efecto del jugo del fruto de Morinda citrifolia en las contorsiones inducidas por ácido acético intraperitoneal en ratones. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas “Dr. Salvador Allende”, La Habana, Cuba.

8 TAN GT, PEZZUTO JM, KINGHORN AD, HUGHES SH, 1991 Evaluation of natural products as inhibitors of human immunodeficiency virus type1 (HIV-1) reverse transcriptase. J Nat Prod 54(1):143-154.

9 Li RW, Myers SP, Leach DN, Lin GD, Leach G, 2003 A cross-cultural study: anti-inflammatory activity of Australian and Chinese plants. J Ethnopharmacol 85(1):25-32.

10 DHAWAN BN, PATNAIK GK, RASTOGI RP, SINGH KK, TANDON JS, 1977 Screening of Indian plants for biological activity. VI. Indian J Exp Biol 15:208-219.

11 Kusamran WR, Tepsuwan A, Kupradinun P, 1998 Antimutagenic and anticarcinogenic potentials of some Thai vegetables. Mutat Res 402(1/2):247-258.

12 RAJ RK, 1975 Screening of indigenous plants for anthelmintic action against human Ascaris lumbricoides. Part II. Indian J Physiol Pharmacol 19(1).

13 Sang S, Cheng X, Zhu N, Stark RE, Badmaev V, Ghai G, Rosen RT, Ho CT, 2001 Flavonol glycosides and novel iridoid glycoside from the leaves of Morinda citrifolia. J Agric Food Chem 49(9):4478-4481.

14 YOUNOS C, ROLLAND A, FLEURENTIN J, LANHERS MC, MISSLIN R, MORTIER F, 1990 Analgesic and behavioural effects of Morinda citrifolia. Planta Med 56(5):430-434.

15 NEGWER M, 1987 Organic chemical drugs and their synonyms (an international survey), 6th ed. Berlin, Germany: Akademie Verlag.

16 BUDAVARI S (Ed.), 2001 The Merck index: an encyclopedia of chemical, drugs, and biologicals. 30th ed. Whitehouse Station, USA: Merck & Co., Inc. p781.

17 NAKANISHI K, SASAKI SI, KIANG AK, GOH J, KAKISAWA H, OHASHI M, GOTO M, WATANABE JM, YOKOTANI H, MATSUMURA C, TOGASHI M, 1965 Phytochemical survey of Malaysian plants. Preliminary chemical and pharmacological screening. Chem Pharm Bull 13(7):882-890.

18 Mokkhasmit M, Swatdimongkol K, Satrawaha P, 1971 Study on toxicity of Thai medicinal plants. Bull Dept Med Sci 12(2/4):36-65.

19 Olmedo D, RODRIGUEZ N, ESPINOSA A, VASQUEZ Y, Gupta MP, 2005 Ensayo antimicrobiano de algunas especies con usos significativos TRAMIL-Centroamérica. Informe TRAMIL. Centro de Investigaciones Farmacognósticas de la Flora Panameña CIFLORPAN, Facultad de Farmacia, Universidad de Panamá, Panamá, Panamá.

20 LOPEZ M, MARTINEZ MJ, MOREJON Z, BOUCOURT E, FUENTES V, MORON F, 2005 Irritabilidad dérmica primaria de hoja fresca machacada de Morinda citrifolia L. Informe TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología, Facultad de Medicina “Dr. Salvador Allende”, Cerro, C. Habana, Cuba.

21 PAZOS L, COTO T, GONZALEZ S, 2006 Irritabilidad dérmica, piel sana en conejos, de hoja fresca machacada de Morinda citrifolia. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos, LEBi, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

22 GarcIa-GONZÁLEZ M, BARBOZA CJ, 2005 Toxicidad aguda (3000 mg/kg) dosis repetida, en ratones, del extracto acuoso de hojas frescas de Morinda citrifolia. Informe TRAMIL.PRONAPLAMED. Depto de Fisiología, Escuela de Medicina, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

23 DUKE JA, ATCHLEY AA, 1986 Handbook of proximate analysis tables of higher plants. Boca Raton, USA: CRC Press. p110.

24 PAZOS L, COTO T, GONZALEZ S, 2006 Antiinflamatorio tópico, en ratones, del extracto acuoso del jugo de hojas de Morinda citrifolia. Informe TRAMIL.Laboratorio de Ensayos Biológicos, LEBi, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

25 FRIAS AI, GARCIA N, MOREJON Z, MORON F, VICTORIA MC, 2009 Efecto antiinflamatorio tópico de la decocción de hojas frescas de Morinda citrifolia L. (noni) en el edema de la oreja inducido por aceite de Croton en ratones. Trabajo TRAMIL. Laboratorio Central de Farmacología. Universidad de Ciencias Médicas de La Habana.

FORMAL DESCARGO

La información presentada es para fines educativos para el público general y los profesionales de la salud. No pretende reemplazar ninguna regulación o disposición legal. Debido a que algunas partes de plantas pueden eventualmente presentar toxicidad, inducir efectos adversos o interacciones con medicamentos, cualquiera que desee usar este recurso o sus productos derivados debería consultar al médico u otro profesional de la salud calificado. TRAMIL no se hace responsable del uso para una decisión, acción u omisión que se haga a partir de la información contenida en esta Farmacopea.