Brassica rapa

nom scientifique : 
Brassica rapa L. subsp. rapa
synonyme : 
Brassica campestris L.
Famille : 

Distribution géographique

Originaire d’Eurasie. Largement cultivée dans les régions tempérées.

Description botanique

Herbacée bisannuelle. Racine typiquement renflée ou allongée, extérieurement de couleur blanche, blanc mêlé de pourpre ou jaunâtre. Presque dépourvue de tige avant la floraison. Feuilles pouvant atteindre 30 cm de long, glauques, parfois en forme de lyre. Tige à inflorescence avec feuilles lobulées. Fleurs à 4 pétales jaunes, disposées en grappes ombelliformes.

Voucher(s)

Jiménez, 693, JBSD

bronchite (expectorante) :

  racine, sirop (décoction + sucre), voie orale1

La feuille et la racine de Brassica rapa constituent un aliment de consommation humaine relativement répandu.

Contre la bronchite :
Préparer un sirop à partir d’une décoction de 50 grammes de racine fraîche hachée menue dans 2 tasses (500 millilitres) d’eau, faire bouillir 10 minutes dans un récipient couvert, filtrer, ajouter 850 grammes de sucre en mélangeant jusqu’à l’obtention d’une solution translucide, puis verser dans un récipient gradué et compléter jusqu’à l’obtention d’1 litre. Boire le contenu d’une cuillère à soupe 3 fois pas jour.

Le sirop doit être conservée au froid et utilisée dans les 4 jours.

Selon l’information disponible :

L’emploi contre la bronchite est classé REC basé sur l’usage significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL et l’information scientifique publiée.

La bronchite présentant un risque pour la santé, il est recommandé de consulter un médecin au préalable. L’emploi de cette solution doit être considéré comme étant le complément du traitement médical, sauf contre-indication.

Si l’on observe une détérioration de l’état du patient, et si le problème respiratoire dure plus de 5 jours, consulter un médecin.

Ne pas employer avec des femmes ayant l’intention de procréer, enceintes ou allaitantes, ni avec des enfants de moins de 5 ans, ni avec des patients souffrant de problèmes de la thyroïde.

Contre-indiqué pour les personnes ayant le diabète.

Solution thérapeutique à ne pas employer pendant plus de 7 jours consécutifs.

Éviter l’ingestion des graines à cause du risque de toxicité.

L’extrait aqueux (infusion) de racine a montré une forte activité antimutagénique in vitro (100 µL/disque, 0,1 mL/plaque) sur le modèle de Salmonella typhimurium TA98 avec activation métabolique face à la mutagénicité induite par le 2-amino-anthracène; à la même concentration on a obtenu une faible activité antimutagènique sur le modèle Salmonella typhimurium TA100 de mutagénicité provoquée par le méthanosulfonate d’éthyle10.

Le jus frais de racine et de feuille, in vitro, sur le modèle Salmonella typhimurium TA98 (0,5 mL/plaque), a été inactif comme antimutagène11. Le jus de la plante sur le même modèle (0,1 mL/plaque) a été actif12. Le jus de plante fraîche, in vitro, (0,5 mL/plaque) a stimulé l’activité des catalases et des péroxydases et sur le modèle Salmonella typhimurium TA98, a été actif comme antimutagène13.

Il existe des effets toxiques de l’huile de la graine sur différents animaux14-17.

La racine par voie orale (9 g/jour/26 jours) sur le rat a induit une activité goitrogénique18.

L’extrait aqueux (décoction) de racine, voie orale (441 g de racine/personne), chez l’adulte humain a provoqué un effet antithyroïdien19.

On ne dispose pas d’information garantissant l’innocuité de son emploi médicinal sur des femmes enceintes ou allaitantes, ni sur des enfants de moins de 12 ans.

La racine contient des protéines : B-II arabinogalactane2, S-méthylsulfoxyde de cystéine3; flavonoïdes : cyanine, rubrobrassicine4; vitamines : acide ascorbique5; composés soufrés : glucobrassicine, progoitrine, gluconapine, gluconasturine et sinigrine6; alcaloïde : allantoïne7.

Analyse proximale pour 100 g de racine8: calories : 21; eau : 92,8%; protéines : 1%; lipides : 0,2%; glucides : 4,4%; fibres : 0,8%; cendres : 0,8%; calcium : 43 mg; phosphore : 33 mg; fer : 0,9 mg; sodium : 60 mg; potassium : 281 mg; carotène : 20 µg; thiamine : 0,04 mg; riboflavine : 0,04 mg; niacine : 0,5 mg; acide ascorbique : 22 mg.

L’extrait aqueux de racine in vitro, en culture sur plaque d’agar-agar, contre Klebsiella pneumoniae et Proteus mirabilis a montré une activité antibactérienne9.

On attribue à l’allantoïne présente dans la racine une action immuno-stimulante7.

Références :  

1 CHARLES C, 1988
TRAMIL survey. Movement for Cultural Awareness MCA, Roseau, Dominica.

2 TSUMURAYA Y, NAKAMURA K, HASHIMOTO Y, YAMAMOTO S, 1984
Immunological properties of arabinogalactan proteins from leaves of cruciferous plants. Agr Biol Chem 48(11):2915-2917.

3 GUSTINE DL, 1985
Determination of S-methyl cysteine sulfoxide in Brassica extracts by high-performance liquid chromatography. J Chromatogr 319(3):450-453.

4 IGARASHI K, ABE S, SATOH J, 1990
Effects of atsumi-kabu (red turnip, Brassica campestris L.) anthocyanin on serum cholesterol levels in cholesterol-fed rats. Agr Biol Chem 54(1):171-175.

5 YAO G, LI YJ, CHANG XQ, LU J, 1983
Vitamin C content in vegetables and fruits in Shenyang (China) market during four seasons. Yingyang Xuebao 5(4):373-379.

6 TAWFIQ N, HEANEY RK, PLUMB JA, FENWICK GR, MUSK SR, WILLIAMSON G, 1995
Dietary glucosinolates as blocking agents against carcinogenesis: glucosinolate breakdown products assessed by induction of quinone reductase activity in murine hepa1c1c7 cells. Carcinogenesis 16(5):1191-1194.

7 DUKE JA, 1992
Handbook of biologically active phytochemical constituents of GRAS herbs and other economic plants. Boca Raton, USA: CRC Press.

8 DUKE JA, ATCHLEY AA, 1986
Handbook of proximate analysis tables of higher plants. Boca Raton, USA: CRC Press. p30.

9 EL-SAYED AM, EL-SAKHEWY FS, 1993
Furochromone and thiooxazolidone principles of Brassica rapa (Turnip). Az J Pharm Sco 11(6):11-20.

10 BADRIA FA, 1994
Is man helpless against cancer? An environmental approach: antimutagenic agents from Egyptian food and medicinal preparations. Cancer Lett 84(1):1-5.

11 MORITA K, HARA M, KADA T, 1978
Studies on natural desmutagens: Screening for vegetable and fruit factors active in inactivation of mutagenic pyrolysis products from amino acids. Agr Biol Chem 42(6):1235-1238.

12 KADA T, MORITA K, INOUE T, 1978
Anti-mutagenic action of vegetable factor(s) on the mutagenic principle of tryptophan pyrolysate. Mutat Res 53(3):351-353.

13 YAMAGUCHI T, YAMASHITA Y, ABE T, 1980
Desmutagenic activity of peroxidase on autoxidized linolenic acid. Agr Biol Chem 44(4):959-961.

14 KRAMER J, MAHADEVAN S, HUNT JR, SAUER FD, CORNER AH, CHARLTON KM, 1973
Growth rate, lipid composition, metabolism and myocardial lesions of rats fed rapeseed oils (Brassica campestris var. arlo, Echo and Span, and B. napus var. oro.) J Nutr 103(12):1696-1708.

15 KRAMER J, FRIEND D, HULAN H, 1975
Lipid changes in tissue of young boars fed rapeseed oil or corn oil. Nutr Metab 19(5-6):279-290.

16 KRAMER JK, HULAN HW, MAHADEVAN S, SAUER FD, CORNER AH, 1975
Brassica campestris var. span: II. Cardiopathogenicity of fractions isolated from span rapeseed oil when fed to male rats. Lipids 10(9):511-516.

17 GRANDHI RR, SLINGER SJ, SUMMERS JP, 1977
Productive performance and liver lesions in two strains of laying hens receiving two rapeseed meals. Poult Sci 56(6):1904-1908.

18 SARKAR SR, SINGH LR, UNIYAL BP, MUKHERJEE SK, NAGPAL KK, 1983
Effect of common vegetables on thyroid function in rats. A preliminary study. Def Sci J 33(4):317-321.

19 GREER MA, ASTWOOD EB, 1948
The antithyroid effect of certain foods in man as determined with radioactive iodine. Endocrinology 43:105-119.

Décharge

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