Brassica rapa

nombre científico: 
Brassica rapa L. subsp. rapa
Familia botánica: 

Descripción botánica

Herbácea bienal. Raíz típicamente globosa o elongada, de color exterior blanco, blanco con púrpura o amarillento. Casi sin tallo antes de florecer. Hojas de hasta 30 cm de largo, glaucas, a veces liradas. Tallo de inflorescencia con hojas lobuladas. Flores con 4 pétalos amarillos, dispuestas en racimos corimbosos.

Voucher(s)

Jiménez,693,JBSD

neumopatía:

  raíz, jarabe (decocción + azúcar), vía oral1

La hoja y la raíz de Brassica rapa constituyen un alimento de consumo humano relativamente extendido.

Para neumopatía:

Preparar un jarabe a partir de una decocción con 50 gramos de raíz fresca picada en 500 mL (2 tazas) de agua, hervir por un mínimo de 10 minutos en un recipiente tapado, filtrar, agregar 850 gramos de azúcar mezclando hasta obtener una solución traslúcida, verter en un recipiente y completar con agua hasta 1 litro.

De acuerdo con la información disponible:

El uso para neumopatía se clasifica como REC con base en el empleo significativo tradicional documentado en las encuestas TRAMIL y la información científica publicada.

Por el riesgo de la neumopatía para la salud, se recomienda una valoración médica inicial. El uso de este recurso debe ser considerado como complementario al tratamiento médico, salvo contraindicación.

En caso de que se observe un deterioro del paciente o que el problema respiratorio persista por más de 5 días debe buscar la atención médica.

No usar en mujeres con intención de procrear, durante el embarazo, la lactancia, en niños menores de 5 años ni en pacientes con enfermedad tiroidea.

No emplear como recurso terapéutico por más de 7 días consecutivos.

Evitar la ingestión de las semillas por el riesgo de toxicidad.

El extracto acuoso (infusión) de raíz mostró fuerte actividad antimutagénica in vitro (100 mL/disco, 0.1 mL/placa) en el modelo de Salmonella typhimurium TA98 con activación metabólica frente a la mutagenicidad inducida por 2-amino-antraceno; con igual concentración fue débilmente antimutagénico en el modelo Salmonella typhimurium TA100 ante la mutagenicidad provocada por metanosulfonato de etilo15.

El zumo fresco de raíz y hoja (0.5 mL/placa) fue inactivo como desmutagénico en el modelo Salmonella typhimurium TA9816..El zumo de la planta fue activo como antimutagénico en el mismo modelo (0.1 mL/placa)17.

El zumo de planta fresca (0.5 mL/placa) estimuló la actividad de las catalasas y peroxidasas y fue activo como desmutagénico en el modelo Salmonella typhimurium TA9818.

El aceite de semilla en el alimento de rata produjo lesiones miocárdicas19; este aceite, agregado a razón del 20% del peso total de la ración alimentaria en jabalí joven de la raza Yorkshire, produjo la muerte entre 1-8 semanas después; el estudio anatomopatológico evidenció lesiones cardiacas, hepáticas y de las glándulas suprarrenales, con acumulación patológica de ácido erúcico y eicosanoico20. La concentración del primero de estos triglicéridos en el aceite ha mostrado una relación directamente proporcional con la cardiotoxicidad de las raciones alimentarias que lo contienen21.

La administración en la dieta de gallina hasta 10% del contenido en aceite de semilla, no causó daños en la producción de huevos, peso de la tiroides ni peso corporal; mientras que al 20% de concentración, provocó trastornos en los aspectos descritos, excepto en el peso de la tiroides y ocurrieron muertes provocadas por hemorragia hepática22.

En embrión, el aceite produjo trastornos en las enzimas adenosintrifosfatasa (ácida y alcalina), peroxidasas, succinato-deshidrogenasa y citocromo-oxidasa; también en la distribución corporal del ácido ascórbico, de polisacáridos y de lípidos23.

No se dispone de información que documente la seguridad de su uso medicinal en niños, durante el embarazo o la lactancia.

La raíz contiene proteínas: B-II arabinogalactano2, S-metil-sulfóxido de cisteína3; flavonoides: cianina, rubrobrasicina4; vitaminas: ácido ascórbico5; compuestos azufrados: glucobrasicina, progoitrina, gluconapina, gluconasturina y sinigrina6; alcaloide: alantoína7.

Análisis proximal de 100 g de raíz8: calorías: 21; agua: 92.8%; proteínas: 1%; grasas: 0.2%; carbohidratos: 4.4%; fibras: 0.8%; cenizas: 0.8%; calcio: 43 mg; fósforo: 33 mg; hierro: 0.9 mg; sodio: 60 mg; potasio: 281 mg; caroteno: 20 µg; tiamina: 0.04 mg; riboflavina: 0.04 mg; niacina: 0.5 mg; ácido ascórbico: 22 mg.

El extracto acuoso de raíz mostró actividad in vitro, en cultivo en placa de agar, contra Klebsiella pneumoniae, Proteus mirabilis, Pseudomonas aeruginosa y P. fluorescens9.

El zumo de raíz fresca por vía intraperitoneal (DE50 = 1.4 mL/animal) a ratón, estimuló el conteo de células blancas sanguíneas y el sistema retículo endotelial. La acumulación de neutrófilos se incrementó en un 42%10.

La fracción polisacárida de raíz seca (20 mL), produjo inmunoprecipitación2.

El extracto metanólico de raíz (200 mg/mL) no inhibió in vitro la replicación del virus de Epstein Barr11.

La raíz indujo actividad bociogénica en rata (9 g/día/26 días)12.

El extracto acuoso de raíz seca por vía oral en conejo, indujo efecto hipoglucemiante13.

La administración oral de raíz hervida provocó efecto antitiroideo en humano adulto (441 g/persona)14.

A la alantoína presente en la raíz se le atribuye acción inmunoestimulante7.

Referencias:  

1 CHARLES C, 1988 TRAMIL survey. Movement for Cultural Awareness MCA, Roseau, Dominica.

2 TSUMURAYA Y, NAKAMURA K, HASHIMOTO Y, YAMAMOTO S, 1984 Immunological properties of arabinogalactan proteins from leaves of cruciferous plants. Agr Biol Chem 48(11):2915-2917.

3 GUSTINE DL, 1985 Determination of S-methyl cysteine sulfoxide in Brassica extracts by high-performance liquid chromatography. J Chromatogr 319(3):450-453.

4 IGARASHI K, ABE S, SATOH J, 1990 Effects of atsumi-kabu (red turnip, Brassica campestris L.) anthocyanin on serum cholesterol levels in cholesterol-fed rats. Agr Biol Chem 54(1):171-175.

5 YAO G, LI YJ, CHANG XQ, LU J, 1983 Vitamin C content in vegetables and fruits in Shenyang (China) market during four seasons. Yingyang Xuebao 5(4):373-379.

6 TAWFIQ N, HEANEY RK, PLUMB JA, FENWICK GR, MUSK SR, WILLIAMSON G, 1995 Dietary glucosinolates as blocking agents against carcinogenesis: glucosinolate breakdown products assessed by induction of quinone reductase activity in murine hepa1c1c7 cells. Carcinogenesis 16(5):1191-1194.

7 DUKE JA, 1992 Handbook of biologically active phytochemical constituents of GRAS herbs and other economic plants. Boca Raton, USA: CRC Press.

8 DUKE JA, ATCHLEY AA, 1986 Handbook of proximate analysis tables of higher plants. Boca Raton, USA: CRC Press. p30.

9 EL-SAYED AM, EL-SAKHEWY FS, 1993 Furochromone and thiooxazolidone principles of Brassica rapa (Turnip). Az J Pharm Sco 11(6):11-20.

10 YAMAZAKI M, NISHIMURA T, 1992 Induction of neutrophil accumulation by vegetable juice. Biosci Biotech Biochem 56(1):150-151.

11 KOSHIMIZU K, OHIGASHI H, TOKUDA H, KONDO A, YAMAGUCHI K, 1988 Screening of edible plants against possible anti-tumor promoting activity. Cancer Lett 39(3):247-257.

12 SARKAR S, SINGH LR, UNIYAL BP, MUKHERJEE SK, NAGPAL KK, 1983 Effect of common vegetables on thyroid function in rats. A preliminary study. Def Sci J 33(4):317-321.

13 GLASER E, WITTNER L, 1924 The blood sugar lowering effect of plant extracts and oxidases, as well as the occurrence of enzymes in insulin. Biochem Z 151:279-295.

14 GREER MA, ASTWOOD EB, 1948 The antithyroid effect of certain foods in man as determined with radioactive iodine. Endocrinology 43:105-119.

15 BADRIA FA, 1994 Is man helpless against cancer? An environmental approach: antimutagenic agents from Egyptian food and medicinal preparations. Cancer Lett 84(1):1-5.

16 MORITA K, HARA M, KADA T, 1978 Studies on natural desmutagens: Screening for vegetable and fruit factors active in inactivation of mutagenic pyrolysis products from amino acids. Agr Biol Chem 42(6):1235-1238.

17 KADA T, MORITA K, INOUE T, 1978 Anti-mutagenic action of vegetable factor(s) on the mutagenic principle of tryptophan pyrolysate. Mutat Res 53(3):351-353.

18 YAMAGUCHI T, YAMASHITA Y, ABE T, 1980 Desmutagenic activity of peroxidase on autoxidized linolenic acid. Agr Biol Chem 44(4):959-961.

19 KRAMER J, MAHADEVAN S, HUNT JR, SAUER FD, CORNER AH, CHARLTON KM, 1973 Growth rate, lipid composition, metabolism and myocardial lesions of rats fed rapeseed oils (Brassica campestris var. arlo, Echo and Span, and B. napus var. oro.) J Nutr 103(12):1696-1708.

20 KRAMER J, FRIEND D, HULAN H, 1975 Lipid changes in tissue of young boars fed rapeseed oil or corn oil. Nutr Metab 19(5-6):279-290.

21 KRAMER JK, HULAN HW, MAHADEVAN S, SAUER FD, CORNER AH, 1975 Brassica campestrisvar. span: II. Cardiopathogenicity of fractions isolated from span rapeseed oil when fed to male rats. Lipids 10(9):511-516.

22 GRANDHI RR, SLINGER SJ, SUMMERS JP, 1977 Productive performance and liver lesions in two strains of laying hens receiving two rapeseed meals. Poult Sci 56(6):1904-1908.

23 MALIK C, VERMANI S, BHATIA D, 1976 III Histochemical characteristics of suspensor during embryo development in Brassica campestris Linn. var. sarson. Acta Histochem 57(2):178-182.

FORMAL DESCARGO

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