Xanthium strumarium

nom scientifique : 
Xanthium strumarium L.
Famille : 

Distribution géographique

Cosmopolite.

Description botanique

Herbe annuelle pouvant atteindre 2 m de haut. Tige âpre ou rugueuse. Feuilles largement ovées ou suborbiculaires de 3 à 5 lobes, à base plus ou moins cordée, de 8 à 18 cm de long, dentées. Capitules mâles à la pointe des branches et à l’axe des feuilles; capitules femelles au nombre de 1 (ou un peu plus) à la base des inflorescences, avec bractées en forme de crochets. Fruit à capsule, ovoïde et épineux; épines droites et crochues à la pointe.

Voucher(s)

Soberats,TR9008,CIFMT

Fuentes,4785,ROIG

infections ou calculs rénaux :

racine, décoction, voie orale1,10

Contre les calculs rénaux :

Préparer une décoction avec 15–20 grammes de racine fraîche ou sèche (15 racines de 10 cm de long) dans 1 litre d’eau (4 tasses), faire bouillir au moins 10 minutes dans un récipient couvert. Laisser refroidir et boire 1 tasse, 3 à 4 fois par jour.

Toute préparation médicinale doit être conservée au froid et utilisée dans les 24 heures.

Selon l’information disponible :

L’emploi contre les calculs rénaux est classé REC sur la base de l’emploi significatif traditionnel documenté par les enquêtes TRAMIL, les études de toxicité, la validation et l’information scientifique publiée.

Si l’état du patient se détériore, ou si l’infection ou les calculs rénaux durent plus de 3 jours, consulter un médecin.

L’emploi de ce remède en cas d’infection ou de calculs rénaux doit être considéré comme un complément du traitement médical compte tenu de ses effets diurétiques.

L’extrait fluide de racine (éthanol 65%) a été administré oralement à des doses de 25, 200 et 2000 mg/kg, sur le modèle des classes toxiques aiguës (CTA) à des rats Wistar des deux sexes. Le poids des animaux a été contrôlé au début ainsi que 7 jours et 14 jours après l’administration de l’extrait. A la fin de la période d’observation de 14 jours, chez les animaux qui avaient reçu la dose maximum, les études histopathologiques de l’estomac, du coeur, des poumons, des reins, du foie, de la rate, du thymus, du cerveau, des glandes surrénales, des ovaires et des testicules n’ont pas montré d'altération. Aucun signe clinique de toxicité ni de mortalité n’a été observé à la fin de l’étude7.

L’extrait hydroalcoolique (50%) de racine, administré par voie intrapéritonéale à la souris, lors d’une expérience de toxicité quantitative, a montré une dose maximum tolérée de 100 mg/kg6.

L’extrait hydroalcoolique (30%) de racine séchée a été administré à 10 souris de la lignée Balb/c, à des doses de 500, 1000 et 2000 mg/kg de poids corporel. L’expérience de génotoxicité lors du test de micronoyaux sur moelle osseuse a été comparée à un témoin positif de cyclophosphamide (20 mg/kg). Il n’y a pas eu de manifestation de cytotoxicité au niveau de la moelle osseuse, ni d’effets génotoxiques. Chez les animaux traités aucune perte de poids corporel n’a été observée, ni aucun signe toxique évidents qui pourrait suggérer une action systémique8.

L’extrait aqueux du fruit séché, administré oralement à des porcs, a provoqué un effet toxique général9.

On ne dispose pas d’information garantissant l’innocuité de son emploi sur des enfants, ni avec des femmes enceintes ou allaitantes.

La racine contient des flavonoïdes; des chalcones; des carbohydrates : glucose, fructose; des stéroïdes : ß-sitostérol, daucostérol; des phénylpropanoïdes : acide caféique et substances inorganiques : nitrate de potassium, sulfate de potassium, chlorure de potassium2.

L’extrait fluide de racine (1 kg/L d’éthanol à 65%) a été administré oralement à des doses de 100, 200 et 400 mg/kg au rat Wistar. Une réponse diurétique similaire au médicament furosémide (5 mg/kg) a été enregistré quant au volume des excrétions urinaires (mL/heure) pendant 6 heures, et à la concentration de sodium et de potassium dans les urines3.

La teinture de racine (20 g/100 mL d’éthanol à 45%), administrée oralement à une dose unique de 60 mg/kg au rat, a produit une diurèse significativement supérieure au groupe témoin (éthanol à 45%) et au groupe traité par hydrochlorothiazide (5 mg/kg) après 2, 4 et 6 heures d’observation. L’excrétion d’électrolytes dans les urines a été significativement supérieure à celle du groupe témoin, mais inférieure aux quantités éliminées par les animaux du groupe traité avec l’hydrochlorothiazide4.

L’extrait méthanolique de parties aériennes séchées a été étudié afin d’identifier des agents de valeur thérapeutique dans la néphropathie par immunoglobuline A. Les résultats ont montré que cet extrait inhibe la prolifération de cellules mésangiales activée par l’interleukine-1bet l’interleukine-6,in vitro (IC50 = 42,8 ± 1,3 µg/mL) et qu’il diminue la production d’interleuquine-1 et de facteur-ade nécrose tumorale5.

L’extrait hydroalcoolique (50%) de racine a été inactif comme cytotoxique, il a présenté une ED50 = 20 mg/mL, dans une culture de cellules CA9KB6.

Références :  

1 CARBALLO A, 1990 Encuesta TRAMIL. Centro de investigación de fitoterapia y medicina tradicional de Topes de Collantes, Trinidad, Cuba.

2 BISHT NP, SINGH R, 1979 Chemical constituents of the stem and roots of Xanthium strumarium. J Indian Chem Soc 56:108-109.

3 JIMENEZ L, LEON MC, HERRERA R, GARCIA G, CADENAS JL, 1999 Efecto diurético de Xanthium strumarium L (guisazo de caballo). Rev Cubana Plantas Med 4(1):22-25.

4 HERRERA R, AGUERO ME, 2000 Efecto diurético de Xanthium strumarium L. en ratas. Archivo Médico de Camagüey (Supl. Med Nat y Trad).

5 KUO YC, SUN CM, TSAI WJ, OU JC, CHEN WP, LIN CY, 1998 Chinese herbs as modulators of human mesangial cell proliferation: preliminary studies. J Lab Clin Med 132(1):76-85.

6 DHAR ML, DHAR MM, DHAWAN BN, MEHROTRA BN, RAY C, 1968 Screening of Indian plants for biological activity: part I. Indian J Exp Biol 6:232-247.

7 JIMENEZ L, LEON MC, HERRERA R, GARCIA G, CADENAS JL, LOPEZ C, 1999 Toxicidad aguda oral del Xanthium strumarium L (guisazo de caballo). Rev Cubana. Plantas Med 4(1):40-43.

8 DIAZ GARCIA GM, 2002 Evaluación del efecto genotóxico del Xhantium strumarium L (guisazo de caballo) (Tesis). Instituto Superior de Ciencias Médicas “Carlos J. Finlay”, Camagüey, Cuba.

9 COLE RJ, STUART BP, LANSDEN JA, COX RH, 1980 Isolation and redefinition of the toxic agent from cocklebur (Xanthium strumarium).J Agric Food Chem 28(6):1330-1332.

10 MOREJON Z, LOPEZ M, GARCIA MJ, BOUCOURT E, VICTORIA M, FUENTES V, MORON F, BOULOGNE I, ROBINEAU L, 2009 Encuesta TRAMIL preliminar a grupos de vecinos en los municipios 10 de Octubre, Lisa, Marianao, Habana del Este (Cojímar) en la Ciudad de la Habana. Laboratorio Central de Farmacología, Universidad de Ciencias Médicas de La Habana, Ciudad de La Habana, Cuba.

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