Vetiveria zizanioides

nombre científico: 
Vetiveria zizanioides (L.) Nash
Familia botánica: 

Descripción botánica

Herbácea, robusta, erguida, perenne. Culmos glabros, de 1 a 2 m de altura. Hojas de hasta 1 m de longitud, glabras, escabrosas en el margen. Panículas alargado-piramidales de hasta 30 cm; racimos individuales de hasta 5 cm; espiguillas purpúreas, sin cerdas.

Voucher(s)

Girón,172,CFEH

Merlo&Tinoco,18,HPMHV

Ochoa,267,HPMHV

fiebre:

raíz y planta entera, decocción, vía oral y baños3

dolor de estómago:

cogollo, decocción, vía oral2

infección urinaria:

cogollo, decocción, vía oral2

dolor de cabeza:

hoja y raíz, decocción, vía oral2

insomnio:

hoja y raíz, decocción, vía oral2

tos:

raíz y planta entera, decocción, vía oral y baños3

dolor abdominal:

raíz, decocción, vía oral1

insomnio:

raíz, decocción, vía oral3

nervios:

raíz, decocción, vía oral3

Para todos los usos mencionados en Recomendaciones:

No se dispone de información para establecer una forma de preparación y dosificación más que la referida por el uso tradicional.

Ninguna preparación debe guardarse por más de 24 horas, ni fuera de refrigeración.

De acuerdo con la información disponible:

El uso de la decocción de raíz contra el insomnio, nervios y tos se clasifica como REC con base en los empleos significativos tradicionales documentados en las encuestas TRAMIL, los estudios de toxicidad, validación y la información científica publicada.

El uso de la decocción de raíz contra dolor abdominal y de decocción de hoja y raíz contra dolor de cabeza se clasifica como REC con base en los empleos significativos tradicionales documentados en las encuestas TRAMIL y los estudios de toxicidad.

El uso de la decocción de cogollo contra dolor de estómago se clasifica como REC con base en los empleos significativos tradicionales documentados en las encuestas TRAMIL, los estudios de toxicidad, validación y la información científica publicada.

El uso de la decocción de cogollo contra infección urinaria se clasifica como REC con base en los empleos significativos tradicionales documentados en las encuestas TRAMIL y los estudios de toxicidad.

El uso por vía oral y en baños de la decocción de raíz y de planta entera contra calentura (fiebre) se clasifica como REC con base en el empleo significativo tradicional documentado en las encuestas TRAMIL y los estudios de toxicidad.

En caso de que se observe un deterioro del paciente o que los síntomas persistan por más de 2 días para calentura (fiebre) y dolor de cabeza, 3 días para dolor de estómago e infección urinaria, 7 días para nervios, debe buscar la atención médica.

Trabajos TRAMIL25-27

Los extractos acuosos liofilizados (decocción) de cogollo, de planta entera (312.5 mg/mL) y de raíz (250 mg/mL), vía oral, a dosis de 5 g/kg/día, durante 5 días a 10 ratones Hsd:ICR(CD-1), (5 machos y 5 hembras), no provocaron muerte ni signo de toxicidad evidente durante un período de observación de 12 días. El control se realizó con agua destilada y desionizada (0.4 mL) a otros 10 ratones de mismas características.

Trabajo TRAMIL16

El extracto acuoso de partes aéreas secas se administró a 39 ratones albinos por vía oral e intraperitoneal (100, 1000 y 2000 mg/kg) y 3 g/kg por vía oral solamente. Ninguno de los ratones murió durante el procedimiento o luego de dos semanas de observación. En la autopsia no se observaron alteraciones macroscópicas de los órganos vitales.

Esto nos indica que la DL1 y DL50 están por encima de estas dosis siendo la toxicidad de estos extractos relativamente baja.

Trabajo TRAMIL28

El extracto acuoso liofilizado, obtenido por decocción de hoja fresca por vía oral a 10 ratones Swiss machos (5 g/kg), durante 14 días de observación no produjo mortalidad, ni alteraciones en el peso corporal, ni tampoco signos de alteración en peso de riñones, hígado, corazón ni pulmones, comparados con los animales tratados con solución salina.

Trabajos TRAMIL29-30

Los extractos acuosos liofilizados (decocción), de planta entera, y por otra parte de raíz (533.33 mg/mL), por vía tópica 1 mL/día/5 días en un área de la piel del lomo de 10 x 5 cm, lesionada con cortes de bisturí, a 3 conejos New Zealand, no provocó síntomas anormales, presencia de eritema ni edema durante el ensayo ni en la observación posterior de 12 días. El control se realizó con agua destilada y desionizada al mismo conejo en el lado contralateral en las mismas condiciones.

El aceite esencial de la raíz puede provocar reacciones de hipersensibilidad y efecto cáustico sobre la piel18.

No se dispone de información que documente la seguridad de su uso medicinal en niños, durante el embarazo o la lactancia.

Trabajo TRAMIL4

Selección fitoquímica preliminar de extracto etanólico (70%) de cogollo.

 alcaloides

 -  

 antracenos

 -  

 taninos

 -

 glicósidos cardioactivos

 -

 flavonoides

 -

 glicósidos cianogenéticos

 -

 saponinas

 -

 esteroles/triterpenos

 -

 cumarinas

 -

 

 

La raíz contiene aceite esencial : triciclovetiveneno, α y ß-isovetiveneno, α y ß-vetiveno, valenceno, nootcateno, α y ß-vetispereno, bi y triciclovetivenoles, α y ß-vetivona, khusona, khusitona, khusimona, ácidos vetivénico, zizanoico, epizizanoico, iso-valencénico5-7; sesquiterpenos : khusimol e iso-khusimol8.

Trabajo TRAMIL9

La decocción de planta entera seca, durante 10 minutos, in vitro (2 mg/mL) en placa de agar no demostró actividad contra bacterias causales de infección gastrointestinal o urinaria: Escherichia coli ATCC25922, Pseudomonas aeruginosa ATCC27853,Salmonella typhi ATCC14028 y Staphylococcus aureus ATCC6558 ni contra levaduras patógenas Candida albicans ATCC10231 y Cryptococcus neoformans C13.

Trabajo TRAMIL10

El extracto acuoso (decocción) de cogollo no mostró actividad antimicrobiana in vitro a una concentración de 1000 µg/mL contra Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa, Candida albicans, Klebsiella pneumoniae, Mycobacterium smegmatis, Salmonella gallinarum, ni Escherichia coli.

Trabajos TRAMIL11-12

Dos extractos acuosos liofilizados, obtenidos por la decocción de hoja y de raíz frescas, fueron administrados por vía oral en una dosis única de 3 g/kg a 10 ratones NGP (5 machos y 5 hembras), el control se realizó con agua destilada (0.5 mL) a otros 10 ratones de la misma cepa y características. Transcurridos 15 minutos, se administró a cada animal 50 mg/kg de pentobarbital sódico al 3% por vía intraperitoneal. Se registró el tiempo de sueño (intervalo de tiempo entre el cual los animales se quedan dormidos hasta que se despiertan y se pueden levantar con las cuatro patas (righting reflex).

De los extractos administrados el de hoja no mostró efecto estadísticamente significativo, sin embargo el de raíz mostró efecto significativo (p £0.01) de potenciación del sueño en ratón. Tiempo de sueño en minutos controles = 24'99'' ±2'44''. Tiempo de sueño en minutos tratamientos = 48'72'' ±4'18''.

Trabajo TRAMIL13

El extracto acuoso (decocción) de raíz (83.33 mg/mL), liofilizado, por vía oral, a dosis única de 1 g/kg, a 20 ratones Hsd:ICR(CD-1), (10 machos y 10 hembras) no modificó el tránsito intestinal. El control se realizó con agua destilada (0.5 mL) a otros 20 ratones de mismas características.

Trabajo TRAMIL14

El extracto acuoso de raíz, por vía oral a 40 ratas hembras Wistar a las que se les ligó el píloro previamente (modelo Shay), con dosis de 1 g de extracto en 30 cc de agua destilada, redujo significativamente el número de úlceras con respecto al grupo control (dosis 25 mg/kg). Sin embargo a dosis más alta los niveles de ácido libre se incrementaron significativamente, lo que constituye un inconveniente para el uso del extracto en el tratamiento de las enfermedades con aumento de la secreción ácido-péptica (si no existe un efecto citoprotector concomitante).

Trabajo TRAMIL15

El extracto acuoso (decocción) liofilizado de cogollo fresco (200 mg/mL) por vía oral (2 g/kg/día/5 días) a 10 ratas Sprague-Dowley (5 hembras y 5 machos), causó una protección contra úlcera gástrica del 65.11% según el protocolo “Manual de Técnicas de Investigación del CYTED”, 1995 y “Metódicas del Dr. Giraldez”, 1991, modificado por el LEBi. La primera y la última dosis se dieron con 24 horas de ayuno a ambos grupos. Se indujeron ulceraciones con 1 mL de etanol absoluto, al grupo de tratamiento y al control positivo, 1 hora después de la última dosis. Al cabo de 5 horas se extrajeron los estómagos para su análisis. El nivel de ulceración para los animales tratados con el extracto fue de 3.0 ± 1.24 y el control positivo de 8.6 ± 9.19.

Trabajo TRAMIL16

El extracto acuoso de raíz por vía oral a 10 conejos criollos adultos (5, 10, 20 y 40 mg/kg), produjo una ligera estimulación respiratoria siendo máxima a dosis de 10 mg/kg. En términos generales y tomando los efectos máximos de dicho estudio se notó incremento de frecuencia respiratoria, flujo aéreo traqueal, volumen de la onda, volumen respiratorio por minuto y presión transpulmonar. Por otro lado disminuyó la resistencia y adaptabilidad pulmonar según el método de Amdur & Mead17, lo que podría sugerir que además de un estímulo de la respiración, existe una broncodilatación ligera y leve disminución de elasticidad pulmonar. En la frecuencia cardiaca, la presión arterial sistólica y diastólica, los cambios fueron mínimos.

El aceite esencial presentó actividad fungicida (p.ej. frente a Trichophyton equinum), fungistática (p.ej. frente a Microsporum gypseum y Trichophyton rubrum), insectífuga (específicamente atribuídas a los compuestos zizanal y epizizanal)18-20 y antibacterianas contra patógenos vegetales21. Se ha reportado actividad in vitro (0.18%) contra Candida albicans , Aspergillus fumigatus (0.22%), Microsporum canis (200 ppm), Trichophyton rubrum (50 ppm)22, Aspergillus flavus, A. niger, Fusarium oxysporum y Penicillium spp23.

El aceite esencial de raíz, sin dilución, aplicado por vía externa al ratón, inhibe en el 100% la penetración transcutánea de Schistosoma cercariae24.

Referencias:  

1 WENIGER B, ROUZIER M, 1986 Enquête TRAMIL. Service Oecuménique d'Entraide SOE, Port au Prince, Haïti.

2 GIRON L, 1988 Encuesta TRAMIL (Costa atlántica). Centro Mesoamericano de Tecnología CEMAT, Guatemala, Guatemala.

3 LAGOS-WITTE S, 1988-89, 1996 Encuesta TRAMIL. Laboratorio de Histología Vegetal y Etnobotánica, Dep. de Biología, Universidad Nacional Autónoma de Honduras UNAH, Tegucigalpa, Honduras.

4 SOLIS PN, RODRIGUEZ N, ESPINOSA A, GUPTA MP, 2004 Estudio fitoquímico de algunas plantas TRAMIL con usos en Martinica. Informe TRAMIL. Centro de Investigaciones Farmacognósticas de la Flora Panameña CIFLORPAN, Facultad de Farmacia, Universidad de Panamá, Panamá, Panamá.

5 SHIBAMOTO T, NISHIMURA O, 1982 Isolation and identification of phenols in oil of vetiver. Phytochemistry 21:793.

6 WEYERSTAHL P, MARSCHALL H, SPLITTGERBER U, WOLF D, 1997 New cis-eudesm-6-ene derivatives from vetiver oil. Liebigs Ann Chem 8:1783-1787.

7 WEYERSTAHL P, MARSCHALL H, SPLITTGERBER U, WOLF D, 1996 New sesquiterpene ethers from vetiver oil. Liebigs Ann Chem (7):1195-1199.

8 LU Y, 1989 Extraction of khusimol and other components fromVetiveria zizanioides roots. Patent Faming Zhuanli Shenging Gongkai Shuomingshu, 1, 033, 462

9 CACERES A, GONZALEZ S, GIRON L, 1998 Demostración de la actividad antimicrobiana de plantas tramil en base a los usos populares en la cuenca del Caribe. Laboratorio de productos fitofarmacéuticos Farmaya y Facultad de Ciencias Químicas y Farmacia, Universidad de San Carlos, Guatemala, Guatemala.

10 SOLIS PN, RODRIGUEZ N, ESPINOSA A, GUPTA MP, 2004 Estudio antimicrobiano de algunas plantas TRAMIL con usos en Martinica. Informe TRAMIL. Centro de Investigaciones Farmacognósticas de la Flora Panameña CIFLORPAN, Facultad de Farmacia, Universidad de Panamá, Panamá, Panamá.

11 GarcIa GM, Coto MT, GonzAlez CS, Pazos L, 2000 Potenciación del sueño, del extracto acuoso de las hojas de Vetiveria zizanioides. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos LEBI, Escuela de Medicina, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

12 GarcIa GM, Coto MT, GonzAlez CS, Pazos L, 2000 Potenciación del sueño, del extracto acuoso de raíz de Vetiveria zizanioides. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos LEBI, Escuela de Medicina, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

13 PAZOS L, COTO T, GONZALEZ S, QUIROS S, 2003 Tránsito intestinal, en ratones, del extracto acuoso de la raíz de Vetiveria zizanioides. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

14 CAMBAR P, COUSIN L, SANTOS A, ALGER J, 1989 Efecto del extracto acuoso de Chrysopogon zizanioides en la prevención de la producción de úlceras gástricas según el método Shay. Informe TRAMIL. Serie de comunicaciones progresivas. Unidad de Farmacología, Facultad de Ciencias Médicas, Universidad Nacional Autónoma de Honduras, Tegucigalpa, Honduras.

15 PAZOS L, COTO T, GONZALEZ S, QUIROS S, 2004 Actividad antiulcerosa en rata, dosis repetidas, del extracto acuoso de cogollos de Vetiveria zizanoides. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

16 CAMBAR P, 1996 Efectos broncopulmonares y cardiovasculares de los extractos acuosos de raíz de Vetiveria zizanioides (L.) Nash ex Small en conejos. Informe TRAMIL. Serie de comunicaciones. Facultad de Ciencias Fisiológicas, Universidad Nacional Autónoma de Honduras. Tegucigalpa, Honduras.

17 AMDUR MD, MEAD J, 1958 Mechanics of respiration in unanesthetized guinea pigs. Amer J Physiol, 192(2):364-368.

18 JAIN SC, NOWICKI S, EISNER T, MEINWALD J, 1982 Insect repellents from vetiver oil: I. Zizanal and epizizanal. Tetrahedron Letr 23(45):4639-4642.

19 DIKSHIT A, HUSAIN A, 1984 Antifungal action of some essential oils against animal pathogens. Fitoterapia 55(3):171-176.

20 SINGH B, AGRAWAL S, 1988 Efficacy of odoriferous organic compounds on the growth of keratinophilic fungi. Curr Sci 57(14):807-809.

21 KINDRA K, SATYANARAYANA T, 1978 Inhibitory activity of essential oils of some plants against pathogenic bacteria. Indian Drugs 16:15-17.

22 CHAUMONT J, BARDEY I, 1989 In vitro antifungal activity of essential oils. Fitoterapia 60(3):147-153.

23 GANGRADE SK, SHRIVASTAVA RD, SHARMA OP, JAIN NK, TRIVEDI KC, 1991 In vitro antifungal effect of the essential oils. Indian Perfum 35(1):46-49.

24 PELLEGRINO J, 1967 Protection against human Schistosome cercariae. Exp Parasitol 21(1):112-131.

25 PAZOS L, COTO T, GONZALEZ S, 2003 Toxicidad oral aguda en ratones, del extracto acuoso de raíz de Vetiveria zizanioides. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

26 PAZOS L, COTO T, GONZALEZ S, 2003 Toxicidad oral aguda en ratones, del extracto acuoso de la planta entera de Vetiveria zizanioides. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

27 PAZOS L, COTO T, GONZALEZ S, 2003 Toxicidad oral aguda en ratones, del extracto acuoso de cogollos de Vetiveria zizanioides. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

28 Hiruma-Lima CA, Souza Brito AR, 2002 Atividades biológicas do extrato hidroalcoólico das folhas de Vetiveria zizanoides. Informe TRAMIL. Depto. Fisiologia, Inst. Biociências UNESP, Botucatu, SP, Brasil.

29 PAZOS L, COTO T, GONZALEZ S, 2003 Irritabilidad dérmica, de piel lesionada en conejos, de planta entera de Vetiveria zizanioides. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

30 PAZOS L, COTO T, GONZALEZ S, 2003 Irritabilidad dérmica, de piel lesionada en conejos, de raíz de Vetiveria zizanioides. Informe TRAMIL. Laboratorio de Ensayos Biológicos, Universidad de Costa Rica, San Pedro, Costa Rica.

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